EP0586789B1 - Gleichmässig verteilte Anreicherung einer in Lösung vorliegenden Substanz auf der feinporigen Seite einer asymmetrisch porösen Membran - Google Patents

Gleichmässig verteilte Anreicherung einer in Lösung vorliegenden Substanz auf der feinporigen Seite einer asymmetrisch porösen Membran Download PDF

Info

Publication number
EP0586789B1
EP0586789B1 EP93105630A EP93105630A EP0586789B1 EP 0586789 B1 EP0586789 B1 EP 0586789B1 EP 93105630 A EP93105630 A EP 93105630A EP 93105630 A EP93105630 A EP 93105630A EP 0586789 B1 EP0586789 B1 EP 0586789B1
Authority
EP
European Patent Office
Prior art keywords
membrane
substance
solution
porous membrane
fine
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
EP93105630A
Other languages
English (en)
French (fr)
Other versions
EP0586789A3 (en
EP0586789A2 (de
Inventor
Herbert Dr. Harttig
Hartmut Dr. Merdes
Hans Lange
Manfred Zeiler
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Roche Diagnostics GmbH
Original Assignee
Roche Diagnostics GmbH
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Roche Diagnostics GmbH filed Critical Roche Diagnostics GmbH
Publication of EP0586789A2 publication Critical patent/EP0586789A2/de
Publication of EP0586789A3 publication Critical patent/EP0586789A3/de
Application granted granted Critical
Publication of EP0586789B1 publication Critical patent/EP0586789B1/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Images

Classifications

    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/52—Use of compounds or compositions for colorimetric, spectrophotometric or fluorometric investigation, e.g. use of reagent paper and including single- and multilayer analytical elements
    • G01N33/525—Multi-layer analytical elements
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/50—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
    • B01L3/502—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
    • B01L3/5023—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures with a sample being transported to, and subsequently stored in an absorbent for analysis
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N1/00—Sampling; Preparing specimens for investigation
    • G01N1/28—Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
    • G01N1/34—Purifying; Cleaning
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/52—Use of compounds or compositions for colorimetric, spectrophotometric or fluorometric investigation, e.g. use of reagent paper and including single- and multilayer analytical elements
    • G01N33/521—Single-layer analytical elements
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00—Additional constructional details
    • B01L2300/08—Geometry, shape and general structure
    • B01L2300/0809—Geometry, shape and general structure rectangular shaped
    • B01L2300/0825—Test strips
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00—Additional constructional details
    • B01L2300/08—Geometry, shape and general structure
    • B01L2300/0887—Laminated structure
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2400/00—Moving or stopping fluids
    • B01L2400/04—Moving fluids with specific forces or mechanical means
    • B01L2400/0403—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces
    • B01L2400/0406—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces capillary forces
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2400/00—Moving or stopping fluids
    • B01L2400/08—Regulating or influencing the flow resistance
    • B01L2400/084—Passive control of flow resistance
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N1/00—Sampling; Preparing specimens for investigation
    • G01N1/28—Preparing specimens for investigation including physical details of (bio-)chemical methods covered elsewhere, e.g. G01N33/50, C12Q
    • G01N1/40—Concentrating samples
    • G01N1/4005—Concentrating samples by transferring a selected component through a membrane
    • G01N2001/4016—Concentrating samples by transferring a selected component through a membrane being a selective membrane, e.g. dialysis or osmosis

Definitions

  • the invention relates to the use of asymmetrically porous membranes in analytical processes and test carriers for implementation such procedures.
  • Such solid analysis media are used as test carriers, above all in the form of flat strips or platelets, which for Investigations, especially of biological liquids, such as blood, plasma, serum, urine etc., carry the required reagents.
  • the carrier materials themselves are solid and contained in usually also the reagents in solid form.
  • carrier materials are, for example, fibrous structures, such as paper, Nonwovens, fabrics, knitted fabrics, nets etc., in the to be examined Liquid swellable or soluble films or porous membranes known.
  • the one for carrying out the determination of analytes in liquids such as B. required body fluids Reagents can pass through to the support materials Impregnation of appropriate solutions or coating with appropriate reagent-containing spreadable compositions and then drying.
  • the carrier materials themselves in their Production with the necessary reagents.
  • films or membranes made of pourable Solutions or suspensions are already made the reagents necessary for the determination of an analyte contain.
  • test carrier When applying a liquid to be examined to one such a test carrier finds a reaction on or in the test carrier between that to be determined in the sample liquid Analyte and the reagents in the carrier material instead of. The reaction products are determined and form a Measure of the amount of analyte in the sample liquid to be examined.
  • U.S. Patent 3,607,093 describes a test carrier for the investigation of biological liquids, the one contains liquid-permeable membrane, which at least in Share a diagnostic reagent in solid form, i.e. H. as contains dry substance.
  • the membrane itself should look like this be that at least one surface part for larger ones Particles, such as erythrocytes, is impermeable.
  • the membrane with a solution of the for the study of biological Liquids required reagent impregnated and dried.
  • EP-A-0 345 781 relates to a test carrier for the investigation of Liquids. It contains an asymmetric-porous membrane, which carries one or more reagents which are in the presence of the produce a detectable substance for the analytes to be determined. To determine an analyte in a liquid, the Sample liquid on the large pore surface of the membrane abandoned while measuring from the fine-pored surface forth.
  • the "BTS Asymmetric Membrane by Filtrite (San Diego, California, USA), since cellular blood components are separated here and the reagent / analyte reaction anywhere in the Membrane expires.
  • reagents that are used in reaction generate a detectable substance with the analyte to be determined, is important for properties important for the detection laid, for example color, chemiluminescence etc., as long as the reagent in the membrane is sufficiently stable.
  • EP-A-0 407 800 is on a test strip for the analysis of Substances directed in biological fluids. It contains an asymmetrically porous membrane, which advantageously is produced from a polymer solution containing 1 to 4% by weight contains an anionic surfactant.
  • the membrane carries the for the reagents necessary for the analyte determination.
  • the analysis is carried out on the liquid to be examined large-pore side abandoned. The measurement of the reaction products takes place from the fine-pored side of the membrane.
  • the invention therefore relates to the use of a asymmetrically porous membrane according to claim 1.
  • the invention relates to a method for Determination of a substance according to claim 3.
  • a particularly advantageous object of the invention is a as described above, characterized in that is that the substance to be determined is hemoglobin and a test carrier suitable therefor according to claim 8.
  • asymmetrically porous is general to the person skilled in the art known and customary (cf. for example EP-A-0 407 800 or EP-A-0 345 781). As a rule, this means one continuously porous polymer film with two opposite Surfaces, the pores of a surface being larger are than that of the opposite surface. According to the invention such asymmetrically porous membranes are preferred, which have an asymmetry factor of more than 10, especially preferably have more than 100. The asymmetry factor gives the ratio of the pore size to the large-pore Surface to the pore size on the fine-pored surface on. Such asymmetrically porous membranes are according to the invention preferably used, in which the pore size on the fine-pored side is 0.003 - 3 ⁇ m.
  • Asymmetrically porous membranes are from the prior art known, for example from US Patent 4,774,039; U.S. patent 4,629,563 or also from EP-A-0 345 781. According to this state Asymmetric porous membranes can be used in the art by those skilled in the art be made yourself. Asymmetrical porous membranes are also available for sale, for example the BTS 25 membrane from Memtec Timonium, Maryland, USA, according to the invention proven to be advantageous. It is about a porous polysulfone membrane. For the subject of the invention have also been useful with polyvinylpyrrolidone alloyed polyethersulfone membranes, as described, for example, in EP-A-0 336 483. Such membranes are for example under the designation PS 11 or PS 21 by the company X-Flow B.V. (Enschede, the Netherlands).
  • the membrane In order to be usable according to the invention, it must be asymmetrical porous membrane of the liquid that is the substance that is on the fine-pored side is to be enriched, contains, wettable be.
  • aqueous liquids like this Body fluids such as blood, plasma, serum, urine, etc. are, the membrane must therefore be sufficiently hydrophilic.
  • the membrane material itself is not sufficiently hydrophilic polymer membranes can also be hydrophilized. For this can treat membranes with such substances, for example that are swellable in water but insoluble.
  • hydroxyalkyl cellulose for the hydrophilization of polymer membranes can be used.
  • Polyvinyl pyrrolidone is also a possible hydrophilizing agent.
  • a membrane is considered to be through the liquid is sufficiently wettable to look at if a drop the sample liquid with a volume of 20 ⁇ l at room temperature fully in within less than 20 sec a membrane piece of 15 by 15 mm or larger is sucked up and is held in the membrane or when a task of a Drops of liquid on the large-pored side of an asymmetrical porous membrane to wet the membrane leads in its entire thickness in the task area.
  • All wettable membranes can be used according to the invention, to the the substance that is enriched on the fine-pored side should not be adsorbed. Whether a certain membrane substance pair this condition can be easily checked will.
  • the substance to be tested is in the solvent solved, with which the enrichment effect is achieved should be, for example in the case of aqueous solutions in water.
  • the solution is one or more layers of membrane in question and then checked, whether the concentration of substances in the solution before and different after passing through the membrane is.
  • An asymmetrically porous membrane is so in 5 layers in a membrane filter holder (for example from Sartorius, Göttingen, Germany) without glass filter, and so placed on a feeding bottle that the large-pored side of the The membrane points upwards.
  • the substance solution to be examined is on the large pore side of the membrane in the filter holder given and by applying a vacuum the membrane sucked.
  • the liquid is measured photometrically to its optical density checked and the value with that of the original solution compared.
  • Adsorption of the dissolved substance on the membrane has occurred when the optical density of the solution clearly before and after passing through the membrane differs.
  • Concentration of the substance in the solution about 1-100 mg / l, Amount of liquid to be sucked through 8 ml, number of Membrane discs 5 pieces, diameter of the membrane discs in Membrane filter holder about 60 mm, thickness of each Membrane disks about 110 to 150 ⁇ m and speed of Aspiration about 0.25 ml / second.
  • Substances that are not or not essential (less than 15% according to the test model described above) on the asymmetrical porous membrane are clearly adsorbed on the enriched fine-pored side of the asymmetrically porous membrane.
  • a corresponding concentration profile is shown in FIGS. 1, 2 and 3. These figures are in Examples 2 and 3 explained in more detail.
  • a concentration profile that shows the behavior shows a substance on an asymmetrically porous membrane, which adsorbs on the membrane and not on the fine-pored Side of the membrane is enriched in Figure 8 shown. This figure is explained in more detail in Example 10.
  • a membrane-wetting solution of the substance brought into contact with the asymmetrically porous membrane This can be done by immersing the membrane in the solution or expediently by applying the solution to the membrane respectively.
  • the solution to the membrane it is Achievement of the enrichment effect regardless of whether the solution on the fine-pored or on the coarse-pored side becomes.
  • the method described above for evenly distributed Enrichment of a substance essentially on a Side of a membrane can be used for a carrier-bound process Determination of an analyte can be used.
  • a solution of the substance to be determined with an asymmetrical porous membrane that is wettable by the solution contacted and on the membrane from the fine-pored side certainly.
  • it is according to the invention necessary that the substance to be determined is not or is not significantly adsorbed on the membrane.
  • the solution of the substance to be determined is applied to the large pore Abandoned side of the membrane.
  • the substance to be determined can also be found in or on the membrane Reagents or substances in one or more Layers are arranged, released or over the membrane be formed.
  • these are carrier-bound Determination procedure test carrier structures can be used, as known from the prior art, however according to the invention, the layer that is measured, be it visually, optically, reflection photometrically etc., an asymmetrical porous membrane is as characterized above.
  • the determination method is particularly suitable good for colored analytes. If the substance to be determined itself is not colored, it can be changed by appropriate Reactions as they are known from clinical analysis, be converted into colored substances or in chemical reactions Give rise to the formation of colored reaction products, which are a measure of the analyte to be determined.
  • the invention used asymmetrically porous membrane has only a low wet transparency, d. H. the reflectance of the invention particularly membrane should be used advantageously after wetting the solvent of the solution to be examined is greater than 20%, better still be greater than 50%. Also in this Connection has for the investigation of aqueous solutions, how there are body fluids, such as blood, plasma, serum, Urine, etc. are polysulfone membranes such as those BTS membrane from Memtec Timonium, Maryland, USA proven.
  • the combination of the filter property is asymmetrically porous Membranes with low wet transparency prove to be special advantageous when examining liquid samples are said to contain colored particulate components. So brings the use according to the invention corresponding asymmetrical porous membranes have great advantages when used in Method for the determination of substances in vehicles Whole blood.
  • a sufficiently hydrophilic membrane with an asymmetry factor greater than 10, preferably greater than 100 the Pores on the fine-pored side of the asymmetrically porous membrane are about 0.003 to 3 ⁇ m in size, the red blood cells (Erythrocytes) prevented from going to the fine pored side to reach the membrane.
  • the method according to the invention for carrier-bound determination a substance has proven to be particularly advantageous for the determination of hemoglobin or hemoglobin derivatives from whole blood. From the values for the hemoglobin concentration in the blood you can also see the hematocrit, that's the Proportion of cellular components in the volume of blood, conclude.
  • Hemoglobin and hemoglobin derivatives such as hemiglobin rhodanide, Hemiglobin cyanide, hemiglobin, oxihemoglobin or alkaline hematin become more hydrophilic when used asymmetrically porous membranes on the fine-pored Very enriched side.
  • a test carrier according to the invention for the determination of hemoglobin or contains hemoglobin derivatives as an essential component an asymmetrically porous membrane made with water is wettable, the hemoglobin or hemoglobin derivative to be determined not significantly adsorbed and the one hemolyzing Carries substance or such substance in one Contains layer arranged over the membrane.
  • Hemolytic agents are known to the person skilled in the art.
  • detergents for the test carrier according to the invention such as anionic, cationic or non-ionic Detergents are used.
  • anionic Detergents are sodium nonyl sulfate, sodium dodecyl sulfate, Sodium dodecyl sulfonate, sodium deoxycholate, sodium dioctyl sulfosuccinate (DONS) or sodium diamyl sulfosuccinate (DANS).
  • cationic detergents are Cetylpyridinium chloride, cetyldimethylethylammonium bromide or Cetyltrimethylammonium bromide can be used.
  • non-ionic Detergents are especially polyoxyethylene ethers known. According to the invention, as a hemolyzing agent Substance or a mixture of several substances used become.
  • the test carrier according to the invention can directly use the hemolysis agent wear on the asymmetrically porous membrane or it can in another layer, which is over the large-pored side the asymmetrically porous membrane is located. No additional layer should be used for the hemolysis agent , the hemolysis agent is expediently brought through Impregnation on the asymmetrically porous membrane. It is also conceivable, the hemolysis agent in a spreadable Apply paste to the large pore side of the membrane and to dry there. When using a separate layer a suitable carrier material also with a solution of Hemolysis agent impregnated or with a spreadable Mass of the hemolysis agent are coated.
  • the type of Backing material does not matter as long as there is none Disturbing the determination reaction. As a possible disturbance you could look at the adsorption of hemoglobin to the carrier material or disruptive reactions of the Introduce carrier material with hemoglobin or hemoglobin derivatives.
  • a glass fiber fleece, for example, has proven suitable proven.
  • Buffer substances have been added to the hemolyzing agent and substances which lead to oxidation or complexation of hemoglobin have been shown to be beneficial.
  • Buffer substances that come into question here are those that one Set the pH in the range of 2-12, preferably 6-8 can.
  • Phosphate buffer (pH 5-8) citrate buffer (pH 2-8), citrate-phosphate-borate buffer (pH 2-12).
  • the test vehicle for the determination of hemoglobin is asymmetrical porous membrane on a rigid material such as a plastic sheet arranged so that the test carrier is better and easier to handle and is asymmetrical porous membrane not when performing the test to have to touch with your fingers.
  • the asymmetrically porous The membrane is attached to this support so that either the task of the sample to be examined or the determination on the surface of the asymmetrically porous membrane can, which faces the carrier. At the task the sample on the surface facing the support of the asymmetrical porous membrane, this means that the rigid support material must be permeable to the sample.
  • There is a hole in the trap and under the trap Hole is attached to the asymmetrically porous membrane so that the sample can be applied to the membrane through the hole can.
  • the carrier in optical measuring methods is translucent.
  • Another option is there also in the fact that there is a hole in the carrier and the membrane over this hole on the substrate is attached so that the corresponding surface of the asymmetrical porous membrane can be measured.
  • test carriers according to the invention for the determination of hemoglobin are shown in Figures 4, 5 and 6.
  • Fig. 7 shows a test carrier with which the uniform Distribution of a substance on the fine-pored side an asymmetrically porous membrane can be demonstrated.
  • asymmetric porous membrane (3) with a bilateral adhesive tape (2) is attached to the strip (1).
  • the asymmetrically porous membrane (3) is attached so that its shows fine-pored side to strip (1).
  • Similar test carrier structures are for example from EP-A-0 256 806 or EP-A-0 407 800 known.
  • a hemolyzing agent and possibly still other substances such as buffer substance and / or Hemoglobin oxidizing or complexing agents in the asymmetric porous membrane (3).
  • Blood (5) is on the large pore Side of the asymmetrically porous membrane (3), the erythrocytes are hemolyzed in the membrane (3) and the released hemoglobin or corresponding hemoglobin derivatives, for example in the presence of oxidizing or complexing substances as additional reagents, in the membrane (3) on the fine-pored side of the asymmetrical porous membrane (3) evenly distributed and enriched.
  • the concentration of hemoglobin or the hemoglobin derivatives on the fine-pored side of the asymmetrically porous membrane (3) determined.
  • Blood (5) is through the hole (4) on the large-pored side of the given asymmetrically porous membrane (3).
  • the measurement is carried out from the side opposite the hole (4) from the fine-pored surface of the membrane (3).
  • a test carrier is shown, which over the large pore Surface of the asymmetrically porous membrane (3) a Layer (6) carries with all or part of the for reagents required for the test can be impregnated.
  • this layer (6) can be used for hemolysis of the erythrocytes required substances.
  • the blood (5) is applied to the layer (6) by these substances dissolved and get into the with the sample liquid Membrane (3).
  • the detection reaction is monitored by the fine-pored side of the membrane (3) through the hole (4).
  • a test carrier in which a strip (8) of stiff, translucent material with Hot melt adhesive (7) attaches an asymmetrically porous membrane (3), which is attached so that the fine-pored surface the strip (8) faces.
  • a layer (6) for example a glass fiber fleece attached that it does not touch the membrane (3) by However, pressure from above can be brought into contact with her can. In the starting position there is therefore a gap (9) between Membrane (3) and layer (6) before. After giving up the liquid Sample on layer (6) the sample stays there, without getting into the membrane (3). The dwell time is freely selectable.
  • An asymmetrically porous membrane BTS 25 (from Memtec Timonium, MD, USA) was impregnated with a solution of 1% sodium dodecyl sulfate, 0.1N phosphate buffer pH 7 and 0.7 mmol / l K 3 Fe (CN) 6 .
  • the liquid intake was the equivalent of 115 ml / m 2 .
  • the liquid-loaded membrane was dried at 50 ° C for 30 minutes. After cooling with liquid nitrogen, the soaked membrane was broken. The cross section was vapor-deposited with carbon and examined for iron in a scanning electron microscope with EDX microanalysis from Cambridge, Nussloch, Germany.
  • An asymmetrically porous membrane (BTS 25, Memtec America Corp. Timonium, Maryland, USA) with a width of 28 cm was in a solution of 1 wt .-% sodium dodecyl sulfate, 0.1 N phosphate buffer pH 7 and 0.7 mmol / l Potassium hexacyanoferrate (III) soaked. The liquid intake was about 115 ml / m 2 . The liquid-loaded membrane was dried at 50 ° C. for 30 minutes.
  • the dry membrane was cut into 8 mm wide strips using a double-sided adhesive tape on a 420 ⁇ m thick PVC film, which was provided with a 6 mm diameter hole in the area of the membrane application, in such a way that in the area of the hole the Membrane was not covered by the double-sided adhesive tape.
  • the orientation of the asymmetrical membrane was chosen so that the fine-pored side was facing the hole (see FIG. 4).
  • about 10 ⁇ l of whole blood was applied to the large-pored side of the membrane in the area of the hole.
  • the spotted test strip was inserted into a suitable measuring device and measured on the fine-pored side after 44 seconds. Between the sample application and the time of measurement, a uniformly dark color developed on the fine-pored side.
  • the test setup did not include any additional measures to distribute the blood on the task side, the results were unexpectedly high.
  • test strip construction analogous to example 5 was realized with the difference that the large-pored side of the membrane for Hole showed (see Fig. 5). The blood was abandoned through the hole in the carrier film. This made it a little easier the accuracy of the sample application. was measured from the fine-pored side. The results were comparable with those from example 5.
  • An asymmetrically porous membrane (BTS 25) was used in test strips between a clear, transparent, 200 ⁇ m thick Folie (Pokalon, Lonza, Weil am Rhein, Germany) and a Glass fiber fleece (Trapo 83/14, J.C. Binzer, Hatzfeld / Eder, Germany) so that the large-pored side faces the glass fiber fleece showed between the membrane and the glass fiber fleece but no contact took place (see Fig. 7).
  • the glass fiber fleece was soaked in hemiglobin cyanide. After done The test strips were soaked in a suitable device Measured by reflection photometry at 567 nm. It was the mechanical contact before the start of the measurement between the soaked fiberglass fleece and the asymmetrical Membrane manufactured. At a hemiglobin cyanide concentration At 7 g / dl, a remission of 32.69% was observed. The coefficient of variation was 1.77%.
  • bromothymol turned blue as not on the fine-pored side of an asymmetrically porous membrane enriching substance examined.
  • the corresponding color solution was the soaked and dried BTS 25 membrane (from Memtec Timonium, MD, USA) in liquid Paraffin (melting point 56 - 58 ° C, Merck, Darmstadt, Germany) dipped and then drained. This caused the membrane to become thin Paraffin layer, which stabilizes the structure, but the Dye or the membrane itself does not dissolve.

Description

Die Erfindung betrifft den Einsatz asymmetrisch poröser Membranen in Analysenverfahren und Testträgern zur Durchführung solcher Verfahren.
Als Testträger werden solche festen Analysemittel, vor allem in Form flacher Streifen oder Plättchen bezeichnet, die für Untersuchungen, insbesondere von biologischen Flüssigkeiten, wie Blut, Plasma, Serum, Urin etc., benötigte Reagenzien tragen. Die Trägermaterialien selbst sind fest und enthalten in der Regel auch die Reagenzien in fester Form. Als Trägermaterialien sind beispielsweise faserige Gebilde, wie Papier, Vliese, Gewebe, Gewirke, Netze etc., in der zu untersuchenden Flüssigkeit quellbare oder lösliche Filme oder poröse Membranen bekannt. Die für die Durchführung der Bestimmung von Analyten in Flüssigkeiten, wie z. B. Körperflüssigkeiten erforderlichen Reagenzien, können auf die Trägermaterialien durch Imprägnierung entsprechender Lösungen oder Beschichtung mittels entsprechender reagenzienhaltiger streichfähiger Massen und anschließende Trocknung hergestellt werden. Alternativ können natürlich auch die Trägermaterialien selbst bei ihrer Herstellung mit den erforderlichen Reagenzien versetzt werden. Beispielsweise können Filme oder Membranen aus gießfähigen Lösungen oder Suspensionen hergestellt werden, die bereits die für die Bestimmung eines Analyten notwendigen Reagenzien enthalten.
Bei Aufgabe einer zu untersuchenden Flüssigkeit auf einen solchen Testträger findet auf bzw. in dem Testträger eine Reaktion zwischen dem in der Probenflüssigkeit zu bestimmenden Analyt und den in dem Trägermaterial befindlichen Reagenzien statt. Die Reaktionsprodukte werden bestimmt und bilden ein Maß für die Menge des Analyten in der zu untersuchenden Probenflüssigkeit.
US-Patent 3,607,093 beschreibt beispielsweise einen Testträger zur Untersuchung biologischer Flüssigkeiten, der eine flüssigkeitsdurchlässige Membran enthält, die zumindest in Teilen ein diagnostisches Reagenz in fester Form, d. h. als trockene Substanz enthält. Die Membran selbst sollte so beschaffen sein, daß zumindest ein Oberflächenteil für größere Partikel, wie beispielsweise Erythrozyten, undurchlässig ist. Wie dem experimentellen Teil zu entnehmen ist, wird die Membran mit einer Lösung des für die Untersuchung biologischer Flüssigkeiten benötigten Reagenzes imprägniert und getrocknet. Bei Aufgabe der zu untersuchenden Flüssigkeit und gegebenenfalls nach Abwischen überschüssiger Flüssigkeit, wird bei Anwesenheit des zu bestimmenden Analyten in der Probenflüssigkeit eine Farbänderung der Membran beobachtet.
EP-A-0 345 781 betrifft einen Testträger zur Untersuchung von Flüssigkeiten. Er enthält eine asymmetrisch-poröse Membran, die ein oder mehrere Reagenzien trägt, die in Gegenwart des zu bestimmenden Analyten eine nachweisbare Substanz erzeugen. Zur Bestimmung eines Analyten in einer Flüssigkeit wird die Probenflüssigkeit auf die großporige Oberfläche der Membran aufgegeben, während die Vermessung von der feinporigen Oberfläche her erfolgt. Als besonders vorteilhaft wird die "BTS Asymmetric Membrane" von Filtrite (San Diego, Kalifornien, USA) beschrieben, da hier zelluläre Blutbestandteile abgetrennt werden und die Reagenz/ Analyt-Reaktion überall in der Membran abläuft. Zur Auswahl der Reagenzien, die bei Reaktion mit dem zu bestimmenden Analyt eine nachweisbare Substanz erzeugen, wird Wert auf für die Detektion wichtige Eigenschaften gelegt, beispielsweise Farbe, Chemilumineszenz etc., solange das Reagenz in der Membran ausreichend stabil ist.
EP-A-0 407 800 ist auf einen Teststreifen zur Analyse von Substanzen in biologischen Flüssigkeiten gerichtet. Er enthält eine asymmetrisch poröse Membran, die vorteilhafterweise aus einer Polymerlösung hergestellt wird, die 1 bis 4 Gew.-% eines anionischen Tensids enthält. Die Membran trägt die für die Analytbestimmung notwendigen Reagenzien. Zur Durchführung der Analyse wird die zu untersuchende Flüssigkeit auf die großporige Seite aufgegeben. Die Vermessung der Reaktionsprodukte erfolgt von der feinporigen Seite der Membran aus.
Keine der Schriften des Standes der Technik beschreibt eine Anreicherung der nachweisbaren Substanz, sei sie farbig, chemilumineszierend etc., auf einer der bezüglich ihrer Porengröße unterschiedlichen Oberflächen asymmetrisch poröser Membranen. Überraschenderweise wurde jetzt gefunden, daß eine Substanz auf der feinporigen Seite einer asymmetrisch porösen Membran gleichmäßig verteilt angereichert werden kann, wenn diese Substanz in Form einer Membran-benetzenden Lösung mit der Membran in Kontakt gebracht wird und wenn die Substanz nicht oder nicht wesentlich an der Membran adsorbiert wird.
Gegenstand der Erfindung ist deshalb die Verwendung einer asymmetrisch porösen Membran gemäß Anspruch 1.
Schließlich ist Gegenstand der Erfindung ein Verfahren zur Bestimmung einer Substanz gemäß Anspruch 3.
Ein besonders vorteilhafter Gegenstand der Erfindung ist ein wie vorstehend beschriebenes Verfahren, welches dadurch gekennzeichnet ist, daß die zu bestimmende Substanz Hämoglobin ist sowie ein hierfür geeigneter Testträger gemäß Anspruch 8.
Der Begriff "asymmetrisch porös" ist dem Fachmann allgemein bekannt und gebräuchlich (vgl. beispielsweise EP-A-0 407 800 oder EP-A-0 345 781). In der Regel versteht man hierunter einen durchgehend porösen Polymerfilm mit zwei sich gegenüberliegenden Oberflächen, wobei die Poren einer Oberfläche größer sind als die der gegenüberliegenden Oberfläche. Erfindungsgemäß sind solche asymmetrisch porösen Membranen bevorzugt, die einen Asymmetriefaktor von mehr als 10, besonders bevorzugt mehr als 100 aufweisen. Der Asymmetriefaktor gibt hierbei das Verhältnis der Porengröße auf der großporigen Oberfläche zu der Porengröße auf der feinporigen Oberfläche an. Erfindungsgemäß sind solche asymmetrisch porösen Membranen bevorzugt einsetzbar, bei denen die Porengröße auf der feinporigen Seite 0,003 - 3 µm beträgt.
Asymmetrisch poröse Membranen sind aus dem Stand der Technik bekannt, beispielsweise aus US-Patent 4,774,039; US-Patent 4,629,563 oder auch aus EP-A-0 345 781. Gemäß diesem Stand der Technik können asymmetrisch poröse Membranen vom Fachmann selbst hergestellt werden. Asymmetrisch poröse Membranen sind auch käuflich erhältlich, beispielsweise hat sich die BTS 25-Membran der Firma Memtec Timonium, Maryland, USA, erfindungsgemäß als vorteilhaft erwiesen. Es handelt sich hierbei um eine poröse Polysulfonmembran. Für den Gegenstand der Erfindung ebenfalls brauchbar haben sich mit Polyvinylpyrrolidon legierte Polyethersulfonmembranen, wie sie beispielsweise in EP-A-0 336 483 beschrieben sind, erwiesen. Solche Membranen werden beispielsweise unter der Bezeichnung PS 11 bzw. PS 21 von der Firma X-Flow B.V. (Enschede, Niederlande) vertrieben.
Um erfindungsgemäß einsetzbar zu sein, muß die asymmetrisch poröse Membran von der Flüssigkeit, die die Substanz, die auf der feinporigen Seite angereichert werden soll, enthält, benetzbar sein. Im Falle von wässrigen Flüssigkeiten, wie es Körperflüssigkeiten, wie Blut, Plasma, Serum, Urin, etc. sind, muß die Membran deshalb ausreichend hydrophil sein. Wenn das Membranmaterial selbst nicht ausreichend hydrophil ist, können Polymermembranen auch hydrophiliert werden. Hierzu können Membranen beispielsweise mit solchen Substanzen behandelt werden, die in Wasser quellbar, aber unlöslich sind. Aus US-Patent 4,413,074 ist beispielsweise bekannt, daß Hydroxyalkylcellulose zur Hydrophilierung von Polymermembranen eingesetzt werden kann. Polyvinylpyrrolidon ist ebenfalls ein mögliches Hydrophilierungsmittel.
Grundsätzlich gilt, daß eine Membran als durch die Flüssigkeit ausreichend benetzbar anzusehen ist, wenn ein Tropfen der Probenflüssigkeit mit einem Volumen von 20 µl bei Raumtemperatur innerhalb von weniger als 20 sec. vollständig in ein Membranstück von 15 mal 15 mm oder größer aufgesaugt wird und in der Membran gehalten wird bzw. wenn eine Aufgabe eines Flüssigkeitstropfens auf die grobporige Seite einer asymmetrisch porösen Membran zu einer Durchfeuchtung der Memban im Aufgabebereich in ihrer gesamten Dicke führt.
Erfindungsgemäß einsetzbar sind alle benetzbaren Membranen, an die die Substanz, die auf der feinporigen Seite angereichert werden soll, nicht adsorbiert. Ob ein bestimmtes Membran-Substanzpaar diese Bedingung erfüllt, kann einfach geprüft werden. Hierzu wird die zu prüfende Substanz in dem Lösungsmittel gelöst, mit dem auch der Anreicherungseffekt erzielt werden soll, beispielswiese im Fall wässriger Lösungen in Wasser. Die Lösung wird durch eine oder mehrere Lagen der in Frage kommenden Membran geschickt und anschließend überprüft, ob die Konzentration der Substanzen in der Lösung vor und nach dem Durchtritt durch die Membran unterschiedlich ist. Für farbige Substanzen kann dies auf folgende Weise geschehen: Eine asymmetrisch poröse Membran wird in 5 Lagen so in einen Membranfilterhalter (beispielsweise der Firma Sartorius, Göttingen, Deutschland) ohne Glasfilter gespannt, und so auf eine Saugflasche gesetzt, daß die großporige Seite der Membran jeweils nach oben zeigt. Die zu untersuchende Substanzlösung wird auf die großporige Seite der Membran im Filterhalter gegeben und unter Anlegen eines Unterdruckes durch die Membran gesaugt. Nach Ihrem Durchtritt durch die Membran wird die Flüssigkeit photometrisch auf ihre optische Dichte hin geprüft und der Wert mit dem der ursprünglichen Lösung verglichen. Adsorption der gelösten Substanz an die Membran hat dann stattgefunden, wenn sich die optische Dichte der Lösung vor und nach dem Durchtritt durch die Membran deutlich unterscheidet. Von einem deutlichen Unterschied kann dann geredet werden, wenn die optische Dichte der Lösung nach dem Durchtritt durch die Membran mindestens etwa 15 % geringer ist als die optische Dichte der ursprünglichen Lösung, wobei auf die Einhaltung folgender Randbedingungen geachtet werden sollte:
Konzentration der Substanz in der Lösung etwa 1-100 mg/l, Menge der durchzusaugenden Flüssigkeit 8 ml, Anzahl der Membranscheiben 5 Stück, Durchmesser der Membranscheiben im Membranfilterhalter etwa 60 mm, Dicke der einzelnen Membranscheiben etwa 110 bis 150 µm und Schnelligkeit des Durchsaugvorgangs etwa 0,25 ml/Sekunde.
Substanzen, die nicht oder nicht wesentlich (weniger als 15 % nach vorstehend beschriebenem Prüfmodell) an der asymmetrisch porösen Membran adsorbiert werden, werden deutlich auf der feinporigen Seite der asymmetrisch porösen Membran angereichert. Ein entsprechendes Konzentrationsprofil ist Fig. 1, 2 und 3 zu entnehmen. Diese Figuren sind in Beispielen 2 und 3 näher erläutert. Ein Konzentrationsprofil, das das Verhalten einer Substanz auf einer asymetrisch porösen Membran zeigt, die an der Membran adsorbiert und nicht auf der feinporigen Seite der Membran angereichert wird, ist in Figur 8 dargestellt. Diese Figur ist in Beispiel 10 näher erläutert.
Um eine Substanz gleichmäßig verteilt auf der feinporigen Seite einer asymmetrisch porösen Membran anzureichern, wird erfindungsgemäß eine Membran-benetzende Lösung der Substanz mit der asymmetrisch porösen Membran in Kontakt gebracht. Dies kann durch Eintauchen der Membran in die Lösung oder zweckmäßigerweise durch Aufgeben der Lösung auf die Membran erfolgen. Bei Aufgabe der Lösung auf die Membran ist es zur Erreichung des Anreicherungseffektes gleichgültig, ob die Lösung auf die feinporige oder auf die grobporige Seite aufgegeben wird.
Das vorstehend beschriebene Verfahren zur gleichmäßig verteilten Anreicherung einer Substanz im wesentlichen auf einer Seite einer Membran kann für ein Verfahren zur trägergebundenen Bestimmung eines Analyten benutzt werden. Hierzu wird eine Lösung der zu bestimmenden Substanz mit einer asymmetrisch porösen Membran, die durch die Lösung benetzbar ist, kontaktiert und auf der Membran von der feinporigen Seite her bestimmt. Wie bereits zuvor ausgeführt, ist es erfindungsgemäß notwendig, daß die zu bestimmende Substanz nicht oder nicht wesentlich an der Membran adsorbiert wird. In der Regel wird die Lösung der zu bestimmenden Substanz auf die großporige Seite der Membran aufgegeben. Die zu bestimmende Substanz kann aber auch durch in oder auf der Membran befindliche Reagenzien oder Stoffe, die in einer oder mehreren Schichten über der Membran angeordnet sind, freigesetzt oder gebildet werden. Im Grunde genommen sind für solche trägergebundenen Bestimmungsverfahren Testträgeraufbauten einsetzbar, wie sie aus dem Stand der Technik bekannt sind, wobei jedoch erfindungsgemäß die Schicht, die vermessen wird, sei es visuell, optisch, reflexionsphotometrisch etc., eine asymmetrisch poröse Membran ist, wie sie vorstehend charakterisiert ist.
Erfindungsgemäß eignet sich das Bestimmungsverfahren besonders gut für farbige Analyten. Falls die zu bestimmende Substanz selbst nicht farbig ist, kann sie durch entsprechende Reaktionen, wie sie aus der klinischen Analytik bekannt sind, in farbige Substanzen überführt werden oder in chemischen Reaktionen Anlaß zur Bildung farbiger Reaktionsprodukte geben, die ein Maß für den zu bestimmenden Analyt darstellen.
Für optische Bestimmungen, seien sie visuell oder apparativ, insbesondere für reflexionsphotometrische Bestimmungen, ist es vorteilhaft, wenn die erfindungsgemäß eingesetzte asymmetrisch poröse Membran nur eine geringe Naßtransparenz aufweist, d. h. der Reflexionsgrad der erfindungsgemäß besonders vorteilhaft einsetzbaren Membran sollte nach Benetzung mit dem Lösungsmittel der zu untersuchenden Lösung größer als 20 %, noch besser jedoch größer als 50 % sein. Auch in diesem Zusammenhang hat sich für die Untersuchung wässriger Lösungen, wie es Körperflüssigkeiten, wie Blut, Plasma, Serum, Urin etc. sind, Polysulfonmembranen, wie beispielsweise die BTS-Membran von Memtec Timonium, Maryland, USA, vorteilhaft erwiesen.
Die Kombination der Filtereigenschaft asymmetrisch poröser Membranen mit geringer Naßtransparenz erweist sich als besonders vorteilhaft, wenn flüssige Proben untersucht werden sollen, die gefärbte partikuläre Komponenten enthalten. So bringt die erfindungsgemäße Verwendung entsprechender asymmetrisch poröser Membranen große Vorteile beim Einsatz in Verfahren zur trägergebundenen Bestimmung von Substanzen in Vollblut. Bei Aufgabe von Vollblut auf die großporige Seite einer ausreichend hydrophilen Membran mit einem Asymmetriefaktor größer als 10, vorzugsweise größer als 100, wobei die Poren auf der feinporigen Seite der asymmetrisch porösen Membran etwa 0,003 bis 3 µm groß sind, werden die roten Blutkörperchen (Erythrozyten) daran gehindert, zur feinporigen Seite der Membran zu gelangen. Sie werden von Plasma oder Serum getrennt, welches die gelösten Probeninhaltsstoffe und gegebenenfalls gelöste Reagenzien und entsprechende Reaktionsprodukte durch Kapillarkraft zur feinporigen Seite der Membran transportiert. Die zu bestimmende Substanz, die bereits ursprünglich in der Probe vorlag oder auf der Membran durch Reagenzkontakt in der Probenflüssigkeit freigesetzt oder gebildet wird, wird hierbei auf der feinporigen Seite gleichmäßig verteilt und angereichert, wenn sie vom Membranmaterial nicht oder nicht wesentlich adsorbiert wird.
Auf diese Art und Weise sind empfindlichere Bestimmungen, als es ohne den Anreicherungseffekt der Fall wäre, möglich. Dadurch, daß gleichzeitig mit der Anreicherung auch eine gleichmäßige Verteilung der zu bestimmenden Substanz auf der feinporigen Seite der asymmetrisch porösen Membran erfolgt, können Messungen mit sehr kleinen Variationskoeffizienten durchgeführt werden.
Das erfindungsgemäße Verfahren zur trägergebundenen Bestimmung einer Substanz hat sich als besonders vorteilhaft erwiesen für die Bestimmung von Hämoglobin oder Hämoglobinderivaten aus Vollblut. Aus den Werten für die Hämoglobinkonzentration im Blut kann man auch auf den Hämatokrit, das ist der Anteil der zellulären Bestandteile am Volumen des Blutes, rückschließen.
Hämoglobin und Hämoglobinabkömmlinge, wie beispielsweise Hämiglobinrhodanid, Hämiglobincyanid, Hämiglobin, Oxihämoglobin oder alkalisches Hämatin werden bei Einsatz ausreichend hydrophiler asymmetrisch poröser Membranen auf der feinporigen Seite sehr stark angereichert.
Ein erfindungsgemäßer Testträger zur Bestimmung von Hämoglobin oder Hämoglobinderivaten enthält als wesentlichen Bestandteil eine asymmetrisch poröse Membran, die mit Wasser benetzbar ist, die das zu bestimmende Hämoglobin oder Hämoglobinderivat nicht wesentlich adsorbiert und die eine hämolysierende Substanz trägt oder eine solche Substanz in einer über der Membran angeordneten Schicht enthält.
Hämolysierende Mittel sind dem Fachmann bekannt. Beispielsweise können für den erfindungsgemäßen Testträger Detergenzien, wie beispielsweise anionische, kationische oder nichtionogene Detergenzien eingesetzt werden. Beispiele für anionische Detergenzien sind Natriumnonylsulfat, Natriumdodecylsulfat, Natriumdodecylsulfonat, Natriumdeoxycholat, Natriumdioctylsulfosuccinat (DONS) oder Natriumdiamylsulfosuccinat (DANS). Als kationische Detergenzien sind beispielsweise Cetylpyridiniumchlorid, Cetyldimethylethylammoniumbromid oder Cetyltrimethylammoniumbromid einsetzbar. Unter den nichtionogenen Detergenzien sind insbesondere Polyoxyethylenäther bekannt. Erfindungsgemäß kann als hämolysierendes Mittel eine Substanz oder eine Mischung aus mehreren Substanzen eingesetzt werden.
Der erfindungsgemäße Testträger kann das Hämolysemittel direkt auf der asymmetrisch porösen Membran tragen oder es kann sich in einer weiteren Schicht, die über der großporigen Seite der asymmetrisch porösen Membran angeordnet ist, befinden. Soll für das Hämolysemittel keine weitere Schicht eingesetzt werden, bringt man zweckmäßigerweise das Hämolysemittel durch Imprägnierung auf die asymmetrisch poröse Membran. Es ist auch denkbar, das Hämolysemittel in einer streichfähigen Paste auf die großporige Seite der Membran aufzubringen und dort zu trocknen. Bei Einsatz einer separaten Schicht kann ein geeignetes Trägermaterial ebenfalls mit einer Lösung des Hämolysemittels imprägniert oder mit einer streichfähigen Masse des Hämolysemittels beschichtet werden. Die Art des Trägermaterials spielt hierbei keine Rolle, solange es keine Störung der Bestimmungsreaktion verursacht. Als mögliche Störung könnte man sich beispielsweise die Adsorption von Hämoglobin an das Trägermaterial oder störende Reaktionen des Trägermaterials mit Hämoglobin oder Hämoglobinderivaten vorstellen. Als geignet hat sich beispielsweise ein Glasfaservlies erwiesen.
Als Zusatz zum hämolysierenden Mittel haben sich Puffersubstanzen sowie Substanzen, welche zu einer Oxidation bzw. Komplexierung des Hämoglobins führen, als vorteilhaft erwiesen. Als Puffersubstanzen kommen hierbei solche in Frage, die einen pH-Wert im Bereich von 2 - 12, vorzugsweise 6 - 8 einstellen können. Als besonders vorteilhaft sind diesbezüglich Phosphatpuffer (pH 5 - 8), Citratpuffer (pH 2 -8), Citrat-Phosphat-Borat-Puffer (pH 2 - 12) zu nennen.
Zur Oxidation von Hämoglobin können alle Substanzen eingesetzt werden, die Eisen oxidieren, nicht aber die Struktur des Hämoglobins zerstören. Als besonders vorteilhaft haben sich höherwertige Metallsalze und -komplexverbindungen erwiesen, wobei Kaliumhexacyanoferrat (III) ganz besonders bevorzugt ist. Zur Komplexierung des hierbei entstandenen Hämiglobin können Substanzen aus der Gruppe Halogenide und Pseudohalogenide eingesetzt werden. Besonders vorteilhaft ist die Verwendung von Cyaniden, Fluoriden oder Rhodaniden. Das erfindungsgemäße Verfahren ist jedoch auch für den Nachweis von nichtkomplexiertem Hämiglobin geeignet.
Bei einer vorteilhaften Ausführungsform eines erfindungsgemäßen Testträgers zur Bestimmung von Hämoglobin ist die asymmetrisch poröse Membran auf einem steifen Material, wie beispielsweise einer Plastikfolie angeordnet, damit der Testträger besser und einfacher handhabbar ist und um die asymmetrisch poröse Membran bei der Durchführung des Tests nicht mit den Fingern berühren zu müssen. Die asymmetrisch poröse Membran ist dabei so auf diesem Träger befestigt, daß entweder die Aufgabe der zu untersuchenden Probe oder die Bestimmung auf der Oberfläche der asymmetrisch porösen Membran erfolgen kann, die dem Träger zugewandt ist. Bei der Aufgabe der Probe auf der dem Träger zugewandten Oberfläche der asymmetrisch porösen Membran bedeutet dies, daß das steife Trägermaterial für die Probe durchlässig sein muß. Im einfachsten Falle befindet sich ein Loch in dem Träger und unter dem Loch ist die asymmetrisch poröse Membran so befestigt, daß die Probe durch das Loch auf die Membran aufgegeben werden kann.
Ist die Oberfläche der asymmetrisch porösen Membran, von der die Vermessung her erfolgen soll, dem Träger zugewandt, darf der Träger diese Vermessung nicht stören. Hierfür ist es beispielsweise denkbar, daß der Träger bei optischen Meßverfahren lichtdurchlässig ist. Eine weitere Möglichkeit besteht auch hier darin, daß sich ein Loch in dem Träger befindet und die Membran über diesem Loch auf dem Trägermaterial so befestigt ist, daß die entsprechende Oberfläche der asymmetrisch porösen Membran vermessen werden kann.
Vorteilhafte Ausführungsformen erfindungsgemäßer Testträger zur Bestimmung von Hämoglobin sind in Figuren 4, 5 und 6 dargestellt. Fig. 7 zeigt einen Testträger, mit dem die gleichmäßige Verteilung einer Substanz auf der feinporigen Seite einer asymmetrisch porösen Membran demonstriert werden kann.
Der Testträger gemäß Fig. 4 besteht aus einem Streifen (1) aus steifem Material, wie beispielsweise einer Plastikfolie mit einem Loch (4). Über dem Loch (4) befindet sich eine asymmetrisch poröse Membran (3), die mit einem beidseitig klebenden Band (2) auf dem Streifen (1) befestigt ist. Die asymmetrisch poröse Membran (3) ist so angebracht, daß ihre feinporige Seite zum Streifen (1) zeigt. Ähnliche Testträgeraufbauten sind beispielsweise aus EP-A-0 256 806 oder EP-A-0 407 800 bekannt. Im Gegensatz zum Stand der Technik enthält der erfindungsgemäße Testträger zur Bestimmung von Hämoglobin jedoch ein hämolysierendes Mittel sowie gegebenenfalls noch weitere Substanzen wie beispielsweise Puffersubstanz und/oder Hämoglobin oxidierende bzw. komplexierende Mittel in der asymmetrisch porösen Membran (3). Blut (5) wird auf die großporige Seite der asymmetrisch porösen Membran (3) gegeben, die Erythrozyten werden in der Membran (3) hämolysiert und das freigesetzte Hämoglobin oder entsprechende Hämoglobin-abkömmlinge, beispielsweise bei Anwesenheit von oxidierenden oder komplexierenden Substanzen als zusätzlichen Reagenzien, in der Membran (3) auf der feinporigen Seite der asymmetrisch porösen Membran (3) gleichmäßig verteilt und angereichert. Durch das Loch (4) wird die Konzentration des Hämoglobins bzw. der Hämoglobin-Abkömmlinge auf der feinporigen Seite der asymmetrisch porösen Membran (3) bestimmt.
Der Testträger gemäß Fig. 5 unterscheidet sich von demjenigen gemäß Fig. 4 dadurch, daß die asymmetrisch poröse Membran (3) so auf dem Streifen (1) befestigt ist, daß die großporige Oberfläche der Membran (3) dem Streifen (1) zugewandt ist.
Blut (5) wird durch das Loch (4) auf die großporige Seite der asymmetrisch poröse Membran (3) gegeben. Die Vermessung erfolgt von der dem Loch (4) gegenüberliegenden Seite von der feinporigen Oberfläche der Membran (3) aus.
In Fig. 6 ist ein Testträger dargestellt, der über der großporigen Oberfläche der asymmetrisch porösen Membran (3) eine Schicht (6) trägt, die mit allen oder mit einem Teil der für den Test erforderlichen Reagenzien imprägniert sein kann. Beispielsweise kann diese Schicht (6) die für die Hämolyse der Erythrozyten erforderlichen Substanzen enthalten. Bei Aufgabe des Blutes (5) auf die Schicht (6) werden diese Substanzen gelöst und gelangen mit der Probenflüssigkeit in die Membran (3). Die Beobachtung der Nachweisreaktion erfolgt von der feinporigen Seite der Membran (3) durch das Loch (4).
In Fig. 7 ist ein Testträger dargestellt, bei dem sich auf einem Streifen (8) aus steifem, durchscheinendem Material mit Schmelzkleber (7) befestigt eine asymmetrisch poröse Membran (3) befindet, die so angebracht ist, daß die feinporige Oberfläche dem Streifen (8) zugewandt ist. Über der Membran (3) ist eine Schicht (6), beispielsweise ein Glasfaservlies so angebracht, daß sie die Membran (3) nicht berührt, durch Druck von oben jedoch mit ihr in Kontakt gebracht werden kann. In der Ausgangslage liegt deshalb ein Spalt (9) zwischen Membran(3) und Schicht (6) vor. Nach Aufgabe der flüssigen Probe auf Schicht (6) verweilt die Probe dadurch dort, ohne in die Membran (3) zu gelangen. Die Verweildauer ist frei wählbar. Erst nach Druck auf die Schicht (6), so daß diese Schicht mit der Membran (3) in Berührung gebracht wird, wird ein Flüssigkeitsübertritt von der Schicht (6) in die Membran (3) ermöglicht. Durch den durchscheinenden Streifen (8) hindurch kann die feinporige Seite der asymmetrisch porösen Membran (3) beobachtet werden. Die Konzentration einer nachweisbaren Substanz kann so durch den Streifen (8) hindurch vermessen werden.
Die Erfindung wird durch die folgenden Beispiele näher erläutert, die jedoch nicht als Beschränkung der Erfindung auf diese konkreten Ausführungsformen verstanden werden sollen.
In den Abbildungen wird folgendes gezeigt:
Fig. 1:
Diagramm einer rasterelektronischen EDX-Mikroanalyse eines mit Kohlenstoff bedampften Querschnitts durch eine mit K3[Fe(CN)6] getränkte asymmetrisch poröse Membran.
Fig. 2:
Darstellung der remissionsphotometrischen Farbintensität über den Querschnitt einer mit Tartrazin getränkten asymmetrisch porösen Membran
Fig. 3:
Darstellung der remissionsphotometrischen Farbintensität über den Querschnitt einer mit Indigotin getränkten asymmetrisch porösen Membran.
Fig. 4-6:
Querschnitte durch vorteilhafte Ausführungsformen erfindungsgemäßer Testträger.
Fig. 7:
Querschnitt durch einen Testträger, mit dem die gleichmäßige Verteilung einer Substanz auf der feinporigen Seite einer asymmetrisch porösen Membran demonstriert wird.
Fig. 8:
Darstellung der remissionsphotometrischen Farbintensität über den Querschnitt einer mit Bromthymolblau getränkten asymmetrisch porösen Membran.
Beispiel 1
a) Auf die großporige Seite einer asymmetrisch porösen Membran (BTS 25, Hersteller Fa. Memtec Timonium, Maryland, USA) werden 10 µl verschiedener Farbstofflösungen gegeben.
Herstellung der Farblösungen:
  • 1. Indigotin (Hersteller Aldrich, Steinheim, Deutschland, Katalog-Nr. 22,929-6)
  • Stammlösung: 20 mg/10 ml Wasser lösen
  • Verdünnung: 10 µl Stammlösung in 20 ml Wasser lösen
  • Konzentration der Farblösung = 1 mg/l
  • 2. Toluidinblau (Hersteller Fluka, Buchs, Schweiz, Katalog-Nr. 89640)
  • a) In Ethanol:
  • Stammlösung: 20 mg/10 ml Ethanol lösen
  • Verdünnung: 100 µl Stammlösung in 10 ml Ethanol lösen
  • Konzentration der Farblösung = 20 mg/l
  • b) In Wasser:
  • Stammlösung: 20 mg/10 ml Wasser lösen
  • Verdünnung: 100 µl Stammlösung in 10 ml Ethanol lösen
  • Konzentration der Farblösung = 20 mg/l
  • 3. Rhodamin B (Hersteller Aldrich, Steinheim, Deutschland, Katalog-Nr 25,242-5)
  • Stammlösung: 12,5 mg in 10 ml Ethanol lösen
  • Verdünnung: 100 µl Stammlösung in 10 ml Ethanol lösen
  • Konzentration der Farblösung = 1,25 mg/l
  • 4. Coomassie blue (Hersteller Serva, Heidelberg, Deutschland, Katalog-Nr. CJ42655)
  • Stammlösung: 20 mg in 8 ml Ethanol lösen
  • Verdünnung: 70 µl Stammlösung in 10 ml Ethanol lösen
  • Konzentration der Farblösung = 17,5 mg/l
  • 5. Tartrazin (Hersteller Serva, Heidelberg, Deutschland, Katalog-Nr. CJ19140)
  • Stammlösung: 20 mg in 2 ml Wasser lösen
  • Verdünnung: 50 µl Stammlösung in 10 ml Wasser lösen
  • Konzentration der Farblösung = 50 mg/l
  • 6. Safranin (Hersteller Aldrich, Steinheim, Deutschland, Katalog Nr. 10,214-8)
  • a) In Ethanol:
  • Stammlösung: 20 mg in 10 ml Ethanol lösen
  • Verdünnung: 100 µl Stammlösung in 10 ml Ethanol lösen
  • Konzentration der Farblösung = 20 mg/l
  • b) In Wasser:
  • Stammlösung: 20 mg in 10 ml Wasser lösen
  • Verdünnung: 100 µl Stammlösung in 10 ml Wasser lösen
  • Konzentration der Farblösung = 20 mg/l
  • 7. Acid green 41 (Hersteller Aldrich, Steinheim, Deutschland, Katalog-Nr. 21,071-4)
  • Stammlösung: 20 mg in 10 ml Ethanol lösen
  • Verdünnung: 400 µl Stammlösung in 10 ml Ethanol lösen
  • Konzentration der Farblösung = 80 mg/l
  • 8. Bromthymolblau (Hersteller E. Merck, Darmstadt, Deutschland, Katalog-Nr. 3026)
  • Stammlösung: 10 mg in 5 ml Puffer pH 9 lösen
  • Verdünnung: 40 µl Stammlösung in 10 ml Puffer lösen
  • Konzentration der Farblösung = 8 mg/l
  • 9. Kaliumhexacyanoferrat III (Hersteller Aldrich, Steinheim, Deutschland, Katalog-Nr. 22,768-4)
  • Stammlösung: 20 mg in 10 ml 0,1 N Phosphatpuffer, pH3 lösen
  • Konzentration der Farblösung = 2000 mg/l
  • Aufgrund des Farbeindrucks, der nach Aufgabe der Lösung auf die großporige Seite auf der feinporigen Seite entsteht, kann beurteilt werden, ob eine Anreicherung auf der feinporigen Seite erfolgt (siehe Ergebnistabelle).
    • b) Zur Überprüfung auf Adsorption oder Nichtadsorption von Substanzen an Membranen werden Filtrationsexperimente durchgeführt. Dazu werden die Farblösungen aus a) durch mehrere Lagen Membranen gefiltert. Die Konzentration an Farbstoff in den Lösungen vor und nach der Filtration wird photometrisch bestimmt.
    Durchführung der Messungen
    Von 10 ml der jeweiligen Farblösung wurden 2 ml abgenommen und in einer 10 mm Küvette mit einem UV/VIS Spektrometer, Modell 845 A, Fa. Hewlett Packard im Vergleich zum reinen Lösungsmittel vermessen.
    Aus einer BTS25-Membran (Fa. Memtec Timonium, MD, USA) wurden Scheiben mit einem Durchmesser von 60 mm gestanzt. Pro Adsorptionsversuch wurde ein Stapel von 5 Membranscheiben, mit der grobporigen Seite nach oben, in einen Membranfilterhalter der Fa. Sartorius (Göttingen, BRD) gespannt. Die Glasfritte wurde vorher aus dem Filterhalter entfernt.
    Der Filterhalter wurde auf eine Saugflasche gesetzt. Die verbliebenen 8 ml Farblösung wurden unter Anlegung eines geringen Unterdrucks durch die Membranlagen gesaugt. Das Filtrat wurde dann entsprechend der Ausgangslösung vermessen. Aus den Extinktionen wurden die Konzentrationen berechnet.
    Ergebnisse:
    Farbstoff Lösemittel Anreicherung Extinktionen Konzentration % Unterschied
    Vor Nach Vor Nach
    Filtration in % Filtration in mg/l
    Indigotin Wasser + 0,055 0,050 1 0,9 -8,78
    Toluidin blau Ethanol + 1,124 1,08 20 19,22 -3,9
    Wasser - 0,47 0,392 20 16,68 1 -16,6
    Rhodamin B Ethanol + 0,329 0,327 1,25 1,2 -0,8
    Coomassie blue Ethanol + 0,68 0,682 17,5 17,55 +0,2
    Tartrazin Wasser + 0,242 0,241 50 49,79 -0,4
    Safranin Ethanol + 0,79 0,79 20 20 0,0
    Wasser - 1,59 1,33 20 16,73 -16,35
    Acid green Ethanol + 0,824 0,821 80 79,71 -0,36
    Bromthymolblau Puffer pH 9 - 0,289 0,163 8 4,51 -43,6
    Kaliumhexacyanoferrat (III) 0,1 N phosphatpuffer pH 3 + 0,383 0,382 2000 1995,3 -0,23
    Es zeigte sich, daß alle Farbstoffe, deren Konzentration weniger als 15 % abnahm, den gefundenen Anreicherungseffekt ergaben, während solche Farbstoffe, deren Konzentrationen stärker abnahmen, den Effekt nicht zeigten.
    c) Prüfung, ob die getesteten Lösungen die Membran benetzen, erfolgt folgendermaßen: Ein Tropfen der Lösung mit 20 µl Volumen wird auf die grobporige Seite der 15 x 15 mm großen Membran aufgesetzt. Die Zeit, bis zum vollständigen Einsaugen wird gemessen. Der Versuch wiederholt, mit dem Unterschied, daß auf die feinporige Seite aufgegeben wird. Liegen beiden Zeiten unter 20 sec. gelten die Lösungen als benetzend.
    Beispiel 2
    Eine asymmetrisch poröse Membran BTS 25 (Fa. Memtec Timonium, MD, USA) wurde mit einer Lösung von 1 % Natriumdodecylsulfat, 0,1N Phosphatpuffer pH 7 und 0,7 mmol/l K3Fe(CN)6 getränkt. Die Flüssigkeitsaufnahme betrug umgerechnet 115 ml/m2. Die flüssigkeitsbeladene Membran wurde 30 Minuten bei 50° C getrocknet. Nach Kühlung mit flüssigem Stickstoff wurde die getränkte Membran gebrochen. Der Querschnitt wurde mit Kohlenstoff bedampft und in einem Rasterelektronenmikroskop mit EDX-Mikroanalyse der Fa. Cambridge, Nußloch, Deutschland auf Eisen untersucht.
    Es kann gezeigt werden, daß sich Eisen auf der feinporigen Seite der Membran stark angereichert hat (Fig. 1). Dies wurde visuell bestätigt durch deutliche Unterschiede in der Gelbfärbung der feinporigen und der grobporigen Seite. Eisensignale auf der grobporigen Seite ergaben sich durch Blick auf die Oberfläche infolge einer leichten Schräglage der Probe in der Meßhalterung.
    Beispiel 3
    Zur Untersuchung von auf der feinporigen Seite einer asymmetrisch porösen Membran anreichernden Farbstoffen wurden Querschnitte von BTS 25-Membranen (Fa. Memtec Timonium, MD, USA) nach Kontakten mit den entsprechenden Farblösungen aus Beispiel 1 hergestellt. Die Membranen wurden dazu mit einer neuen Rasierklinge zerschnitten. Der Querschnitt wurde in einem Lichtmikroskop mit angeschlossenem Farbvideoprinter photografiert und als vergrößerter Videoprint ausgedruckt. Der Farbausdruck wurde anschließend auf einem remissionsphotometrischen Scanner, Elscript 400, Fa. Hirschmann, Deutschland abgescannt. Aus 4 Meßfahrten wurde ein Mittelwert gebildet. Damit konnte der optische Eindruck quantitativ dargestellt werden. Beispielhaft sind in Fig. 2 die Ergebnisse von Tartrazin und in Fig. 3 die Ergebnisse mit Indigotin als sich anreichernden Substanzen dargestellt. Die grobe Struktur auf der großporigen Seite täuscht im Diagramm mehr Farbe vor, als tatsächlich vorhanden ist, da Schwarz vom Scanner auch als Farbe interpretiert wird.
    Beispiel 4
    10 µl Hämiglobincyanidlösung (7 g/dl) werden auf die grobporige Seite einer 12 x 8 mm großen asymmetrischen Membran (BTS 25, Memtec Timonium, Maryland, USA) aufgegeben. Die Remission auf der feinporigen Seite wurde nach acht Sekunden bei 567 nm gemessen. Bei 50 Messungen wurde ein Mittelwert der Remission von 40,25 % mit einem Variationskoeffizient von 1,14 % beobachtet.
    Beispiel 5
    Eine asymmetrisch poröse Membran (BTS 25, Memtec America Corp. Timonium, Maryland, USA) mit einer Breite von 28 cm wurde in einer Lösung von 1 Gew.-% Natriumdodecylsulfat, 0,1 N Phosphatpuffer pH 7 und 0,7 mmol/l Kaliumhexacyanoferrat (III) getränkt. Die Flüssigkeitsaufnahme betrug etwa 115 ml/m2. Die flüssigkeitsbelastete Membran wurde 30 Minuten bei 50 °C getrocknet. Die trockene Membran wurde in 8 mm breite Streifen geschnitten, mit Hilfe eines doppelseitigen Klebebandes auf eine 420 µm dicke PVC-Folie, die im Bereich der Membranapplikation mit einem 6 mm-Durchmesser großen Loch versehen war, so aufgeklebt, daß im Bereich des Loches die Membran nicht von dem doppelseitigen Klebestreifen bedeckt wurde. Die Orientierung der asymmetrischen Membran wurde so gewählt, daß die feinporige Seite zum Loch zeigte (vgl. Fig. 4). Anschließend wurden im Bereich des Loches ca. 10 µl Vollblut auf die großporige Seite der Membran aufgegeben. Der getüpfelte Teststreifen wurde in ein geeignetes Meßgerät eingeführt und nach 44 Sekunden auf der feinporigen Seite ausgemessen. Zwischen der Probenaufgabe und dem Meßzeitpunkt bildete sich auf der feinporigen Seite eine gleichmäßig dunkle Färbung aus. Obwohl der Testaufbau keinerlei zusätzliche Maßnahmen zur Verteilung des Blutes auf der Aufgabenseite beinhaltete, ergab sich eine unerwartet hohe Präzision der Ergebnisse. Der Variationskoeffizient betrug 1,6 % bei n = 10 (n = Anzahl der Messungen).
    Beispiel 6
    Ein Teststreifenaufbau analog Beispiel 5 wurde realisiert mit dem Unterschied, daß die großporige Seite der Membran zum Loch zeigte (vgl. Fig. 5). Die Aufgabe des Blutes erfolgte durch das Loch in der Trägerfolie. Dies erleichterte etwas die Treffgenauigkeit bei der Probenaufgabe. Gemessen wurde von der feinporigen Seite her. Die Ergebnisse waren vergleichbar mit denen aus Beispiel 5.
    Beispiel 7
    Ein Teststreifenaufbau analog Beispiel 5 (entspricht Fig. 4) wurde realisiert mit dem Unterschied, daß die Tränklösung die folgende Zusammensetzung hatte:
  • 0,3 Gew.-% Natriumdioctylsulfosuccinat (DONS) (E. Merck, Darmstadt, Deutschland)
  • 0,3 Gew.-% Natriumdiamylsulfosuccinat (DANS) (Cyanamid, Wolfratshausen/Obb., Deutschland)
  • 0,2 Gew.-% Saponin
  • 0,2 Gew.-% Kaliumhexacyanoferrat (III) in
  • 0,1 mol/l Citratpuffer, pH 6,8
    • Die Durchführung der Messung entsprach Beispiel 5. Der Variationskoeffizient betrug in diesem Fall 1,25 % bei n = 10.
    Beispiel 8
    Eine asymmetrisch poröse Membran (BTS 25) wurde in Teststreifen zwischen eine klare, transparente, 200 µm dicke Folie (Pokalon, Lonza, Weil am Rhein, Deutschland) und ein Glasfaservlies (Trapo 83/14, Fa. J.C. Binzer, Hatzfeld/Eder, Deutschland) so montiert, daß die großporige Seite zum Glasfaservlies zeigte, zwischen der Membran und dem Glasfaservlies aber keine Berührung stattfand (vgl. Fig. 7). Das Glasfaservlies wurde mit Hämiglobincyanid getränkt. Nach erfolgter Tränkung wurden die Teststreifen in einem geeigneten Gerät reflexionsphotometrisch bei 567 nm vermessen. Dabei wurde vor Meßbeginn durch die Meßeinrichtung der mechanische Kontakt zwischen dem getränkten Glasfaservlies und der asymmetrischen Membran hergestellt. Bei einer Hämiglobincyanidkonzentration von 7 g/dl wurde eine Remission von 32,69 % beobachtet. Der Variationskoeffizient betrug 1,77 %.
    Beispiel 9
    Der Versuch nach Beispiel 8 wurde wiederholt, aber ohne die Membran zwischen dem Glasfaservlies und der transparenten Folie. Die Ergebnisse zeigten bei diesem Vorgehen einen Variationskoeffizienten von 5,84 %.
    Ein Vergleich der Beispiele 8 und 9 zeigt deutlich, daß die verwendete Membran zu einer Vergleichmäßigung der Farbabbildung führt. Die Anwendung ist nicht auf analytische Verfahren zur Bestimmung des Hämoglobins im Blut beschränkt, sondern kann immer dann erfolgen, wenn es notwendig oder wünschenswert ist, die Homogenität einer Farbabbildung zu steigern.
    Beispiel 10
    In Analogie zu Beispiel 3 wurde Bromthymolblau als sich nicht auf der feinporigen Seite einer asymmetrisch porösen Membran anreichernde Substanz untersucht. Nach Kontakt mit einer entsprechenden Farblösung wurde die getränkte und getrocknete BTS 25-Membran (Fa. Memtec Timonium, MD, USA) in flüssiges Paraffin (Schmelzpunkt 56 - 58 °C, Fa. Merck, Darmstadt, Deutschland) getaucht und anschließend abtropfen gelassen. Dadurch überzog sich die Membran mit einer dünnen Paraffinschicht, welche die Struktur stabilisiert, aber den Farbstoff oder die Membran selbst nicht anlöst.
    Analog Beispiel 3 wurde ein Konzentrationsprofil erstellt. Figur 8 zeigt, daß die Farbintensität und damit die Farbkonzentration weitgehend konstant über die Membrandicke ist.

    Claims (12)

    1. Verwendung einer asymmetrisch porösen Membran zur gleichmäßig verteilten Anreicherung einer Substanz, die nicht oder nicht wesentlich an der Membran adsorbiert wird, in einer Membran-benetzenden Lösung auf der feinporigen Seite der Membran, wobei unter Membran-benetzend verstanden wird, daß die Zeit, die zum vollständigen Einsaugen eines Tropfens der Lösung mit einem Volumen von 20 µl, der auf ein 15×15 mm2 großes Membranstück aufgegeben wird, benötigt wird, sowohl bei Aufgabe auf die grobporige als auch bei Aufgabe auf die feinporige Seite der Membran weniger als 20 s beträgt, und wobei unter nicht oder nicht wesentlich an der Membran adsorbiert verstanden wird, daß nach dem Durchsaugen von 8 ml einer Lösung der Substanz durch einen Stapel aus fünf Membranscheiben der asymmetrisch porösen Membran, wobei die Membranscheiben einen Durchmesser von 60 mm besitzen und die Lösung der Substanz auf die grobporige Seite der asymmetrisch porösen Membran aufgebracht wird, die Konzentration der Substanz im Filtrat verglichen mit der Konzentration der Substanz in der Ausgangslösung um weniger als 15 % abnimmt.
    2. Verwendung gemäß Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß der Asymmetriefaktor der asymmetrisch porösen Membran größer als 10 ist.
    3. Verfahren zur trägergebundenen Bestimmung einer Substanz in einer flüssigen Probe, bei dem eine Lösung der zu bestimmenden Substanz mit einer asymmetrisch porösen Membran kontaktiert oder die zu bestimmende Substanz in der Probe durch eine oder mehrere auf der Membran oder auf einer der Membran vorgelagerten Schicht vorliegende Stoffe freigesetzt oder gebildet wird und auf der Membran von der feinporigen Seite her bestimmt wird, wobei die zu bestimmende Substanz in der Membran-benetzenden Lösung nicht oder nicht wesentlich an der Membran adsorbiert wird und auf der feinporigen Seite der Membran gleichmäßig angereichert wird, wobei unter Membran-benetzend verstanden wird, daß die Zeit, die zum vollständigen Einsaugen eines Tropfens der Lösung mit einem Volumen von 20 µl, der auf ein 15×15 mm2 großes Membranstück aufgegeben wird, benötigt wird, sowohl bei Aufgabe auf die grobporige als auch bei Aufgabe auf die feinporige Seite der Membran weniger als 20 s beträgt, und wobei unter nicht oder nicht wesentlich an der Membran adsorbiert verstanden wird, daß nach dem Durchsaugen von 8 ml einer Lösung der Substanz durch einen Stapel aus fünf Membranscheiben der asymmetrisch porösen Membran, wobei die Membranscheiben einen Durchmesser von 60 mm besitzen und die Lösung der Substanz auf die grobporige Seite der asymmetrisch porösen Membran aufgebracht wird, die Konzentration der Substanz im Filtrat verglichen mit der Konzentration der Substanz in der Ausgangslösung um weniger als 15 % abnimmt.
    4. Verfahren gemäß Anspruch 3, dadurch gekennzeichnet, daß die asymmetrisch poröse Membran einen Asymmetriefaktor größer als 10 besitzt.
    5. Verfahren gemäß Anspruch 3 oder 4, dadurch gekennzeichnet, daß die Porengröße auf der feinporigen Seite der asymmetrisch porösen Membran etwa 0.003 bis 3 µm beträgt.
    6. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 3 bis 5, dadurch gekennzeichnet, daß die asymmetrisch poröse Membran nach Benetzung durch das Lösungsmittel der zu untersuchenden flüssigen Probe noch mehr als 20% einer Meßstrahlung reflektiert.
    7. Verfahren gemäß einem der Ansprüche 3 bis 6, dadurch gekennzeichnet, daß die zu bestimmende Substanz Hämoglobin oder ein Hämoglobinderivat ist.
    8. Testträger zur Bestimmung einer Substanz in einer flüssigen Probe, wobei der Testträger eine asymmetrisch poröse Membran enthält, dadurch gekennzeichnet, daß die Substanz Hämoglobin ist, welches in der Membran-benetzenden wässrigen Lösung nicht oder nicht wesentlich an die Membran adsorbiert wird, auf der feinporigen Seite der Membran gleichmäßig verteilt angereichert wird und von der Feinporigen Seite her bestimmt werden kann, wobei unter Membran-benetzend verstanden wird, daß die Zeit, die zum vollständigen Einsaugen eines Tropfens der Lösung mit einem Volumen von 20 µl, der auf ein 15×15 mm2 großes Membranstück aufgegeben wird, benötigt wird, sowohl bei Aufgabe auf die grobporige als auch bei Aufgabe auf die feinporige Seite der Membran weniger als 20 s beträgt, und wobei unter nicht oder nicht wesentlich an der Membran adsorbiert verstanden wird, daß nach dem Durchsaugen von 8 ml einer Lösung der Substanz durch einen Stapel aus fünf Membranscheiben der asymmetrisch porösen Membran, wobei die Membranscheiben einen Durchmesser von 60 mm besitzen und die Lösung der Substanz auf die grobporige Seite der asymmetrisch porösen Membran aufgebracht wird, die Konzentration der Substanz im Filtrat verglichen mit der Konzentration der Substanz in der Ausgangslösung um weniger als 15 % abnimmt, und wobei die Membran selbst eine hämolysierende Substanz trägt oder eine solche Substanz in einer vorgelagerten Schicht enthält.
    9. Testträger gemäß Anspruch 8, dadurch gekennzeichnet, daß die asymmetrisch poröse Membran zusätzlich eine Substanz trägt, die zur Oxidation oder Komplexierung freien Hämoglobins führt.
    10. Testträger gemäß einem der Ansprüche 8 bis 9 dadurch gekennzeichnet, daß die asymmetrisch poröse Membran auf einem festen Material so befestigt ist, daß die Aufgabe der zu bestimmenden Substanz in der Probe oder die Bestimmung der Substanz in der Probe auf der Seite der asymmetrisch porösen Membran erfolgt, die dem festen Material zugewandt ist.
    11. Testträger gemäß Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet, daß das feste Material durchscheinend ist.
    12. Testträger gemäß Anspruch 10, dadurch gekennzeichnet, daß das feste Material ein Loch enthält, über dem die asymmetrisch poröse Membran befestigt ist.
    EP93105630A 1992-04-11 1993-04-06 Gleichmässig verteilte Anreicherung einer in Lösung vorliegenden Substanz auf der feinporigen Seite einer asymmetrisch porösen Membran Expired - Lifetime EP0586789B1 (de)

    Applications Claiming Priority (2)

    Application Number Priority Date Filing Date Title
    DE4212280A DE4212280A1 (de) 1992-04-11 1992-04-11 Asymmetrisch poröse Membranen
    DE4212280 1992-04-11

    Publications (3)

    Publication Number Publication Date
    EP0586789A2 EP0586789A2 (de) 1994-03-16
    EP0586789A3 EP0586789A3 (en) 1994-07-27
    EP0586789B1 true EP0586789B1 (de) 1999-11-24

    Family

    ID=6456672

    Family Applications (1)

    Application Number Title Priority Date Filing Date
    EP93105630A Expired - Lifetime EP0586789B1 (de) 1992-04-11 1993-04-06 Gleichmässig verteilte Anreicherung einer in Lösung vorliegenden Substanz auf der feinporigen Seite einer asymmetrisch porösen Membran

    Country Status (6)

    Country Link
    US (1) US6287867B1 (de)
    EP (1) EP0586789B1 (de)
    JP (1) JP2815773B2 (de)
    AT (1) ATE186982T1 (de)
    DE (2) DE4212280A1 (de)
    ES (1) ES2141739T3 (de)

    Families Citing this family (14)

    * Cited by examiner, † Cited by third party
    Publication number Priority date Publication date Assignee Title
    AU692845B2 (en) * 1994-03-04 1998-06-18 Memtec America Corporation Large pore synthetic polymer membranes
    US6638415B1 (en) 1995-11-16 2003-10-28 Lifescan, Inc. Antioxidant sensor
    US6200532B1 (en) * 1998-11-20 2001-03-13 Akzo Nobel Nv Devices and method for performing blood coagulation assays by piezoelectric sensing
    SE518539C2 (sv) * 2000-06-28 2002-10-22 Migrata U K Ltd Sätt och kyvett för kvantitativ hemoglobinbestämning i outspätt helblod
    AU2000267325A1 (en) * 2000-08-28 2002-03-13 Sapporo Immuno Diagnostic Laboratory Simple implement for collecting/recovering liquid sample
    CN100437114C (zh) 2001-04-12 2008-11-26 爱科来株式会社 样品分析装置
    US20060062688A1 (en) * 2004-02-03 2006-03-23 Polymer Technology Systems, Inc. Bodily fluid analysis system
    US7625721B2 (en) 2004-02-03 2009-12-01 Polymer Technology Systems, Inc. Non-precipitating bodily fluid analysis system
    US8465696B2 (en) * 2004-02-03 2013-06-18 Polymer Technology Systems, Inc. Dry test strip with controlled flow and method of manufacturing same
    WO2006023679A1 (en) * 2004-08-17 2006-03-02 Polymer Technology Systems, Inc. Apparatus and method for manufacturing bodily fluid test strip
    TWI460007B (zh) 2009-04-13 2014-11-11 Entegris Inc 多孔複合薄膜
    EP3078956A4 (de) * 2013-12-03 2017-06-28 The University of Tokyo Trenneinheit, trennverfahren, flüssigkeitsvorrichtung und kompositflüssigkeitsvorrichtung und -kit
    DE102018004521A1 (de) * 2018-06-07 2019-12-12 Sartorius Stedim Biotech Gmbh Serielle Anordnung mit mehreren Lagen asymmetrischer Filtermedien, Herstellungsverfahren, Filtrationseinheit, Verwendung der Anordnung und Charakterisierungsverfahren
    CN116324407A (zh) * 2021-10-19 2023-06-23 谷歌有限责任公司 用于确定血红蛋白浓度的竖直流动测定设备和方法

    Family Cites Families (36)

    * Cited by examiner, † Cited by third party
    Publication number Priority date Publication date Assignee Title
    US3607093A (en) 1968-02-15 1971-09-21 Schering Corp Devices for testing biological liquids
    NO770196L (no) * 1976-01-22 1977-07-25 Wellcome Found Kjemiske pr¦vesystemer.
    DE2729924C2 (de) * 1977-07-02 1985-06-05 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Vorrichtung zur Dosierung von Stuhlmengen auf Reagenzpapieren
    JPS5917386B2 (ja) * 1979-03-23 1984-04-20 テルモ株式会社 血液分離方法および装置
    US4307188A (en) * 1979-09-06 1981-12-22 Miles Laboratories, Inc. Precursor indicator compositions
    US4323536A (en) * 1980-02-06 1982-04-06 Eastman Kodak Company Multi-analyte test device
    US4629563B1 (en) * 1980-03-14 1997-06-03 Memtec North America Asymmetric membranes
    US4774039A (en) 1980-03-14 1988-09-27 Brunswick Corporation Dispersing casting of integral skinned highly asymmetric polymer membranes
    US4427416A (en) * 1980-10-10 1984-01-24 Duke University Processes for extracting oxygen from fluids using immobilized hemoglobin
    JPS5767860A (en) * 1980-10-15 1982-04-24 Fuji Photo Film Co Ltd Material for multilayer analysis
    DE3134611A1 (de) * 1981-09-01 1983-03-10 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Verfahren zur durchfuehrung analytischer bestimmungen und hierfuer geeignetes mittel
    US4558032A (en) * 1981-12-31 1985-12-10 Neomed Inc. Synthetic whole blood substitute and a method of making the same
    US4413074A (en) * 1982-01-25 1983-11-01 Brunswick Corporation Hydrophilic surfaces and process for making the same
    DE3323973A1 (de) * 1983-07-02 1985-01-03 Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim Erythrozyten-rueckhaltesubstrate
    DE3407359A1 (de) * 1984-02-29 1985-08-29 Bayer Ag, 5090 Leverkusen Testvorrichtung und methode zum nachweis einer komponente einer fluessigen probe
    US4806311A (en) * 1985-08-28 1989-02-21 Miles Inc. Multizone analytical element having labeled reagent concentration zone
    US4935346A (en) 1986-08-13 1990-06-19 Lifescan, Inc. Minimum procedure system for the determination of analytes
    US4774192A (en) * 1987-01-28 1988-09-27 Technimed Corporation A dry reagent delivery system with membrane having porosity gradient
    JPS63196849A (ja) * 1987-02-12 1988-08-15 Fuji Photo Film Co Ltd 一体型多層分析要素
    US4912034A (en) * 1987-09-21 1990-03-27 Biogenex Laboratories Immunoassay test device and method
    DE3735684A1 (de) * 1987-10-22 1989-05-03 Boehringer Mannheim Gmbh Immunreaktives traegermaterial und verfahren zu seiner herstellung
    GB2213932A (en) * 1987-12-15 1989-08-23 Pall Corp Dipstick immunodiagnostic device
    US5114673A (en) * 1988-01-21 1992-05-19 Boehringer Mannheim Corporaton Apparatus for determination of a component in a sample
    NL8800796A (nl) 1988-03-29 1989-10-16 X Flow Bv Werkwijze voor de chemische analyse van bestanddelen van een lichaamsvloeistof, alsmede een testinrichting en testpakket voor een dergelijke analyse.
    JP2644331B2 (ja) 1988-06-09 1997-08-25 アプライズ・インコーポレーテッド 液体の化学的分析のための改良可処分装置
    DE3826057A1 (de) * 1988-07-30 1990-02-01 Boehringer Mannheim Gmbh Testtraeger zur analytischen bestimmung eines bestandteils einer fluessigen probe
    JPH0721455B2 (ja) * 1988-12-01 1995-03-08 株式会社京都第一科学 液体試料中の特定成分を分析するための用具および方法
    US5234812A (en) * 1988-12-08 1993-08-10 Boehringer Mannheim Corporation Method for sequential determination of an analyte in a fluid sample using a third receptor
    DE69014958T2 (de) 1989-04-07 1995-07-06 Ube Industries Pervaporationsverfahren zur selektiven Trennung von Wasser aus einer organische Verbindungen enthaltenden wässerigen Lösung mittels einer asymmetrischen Membran aus einem aromatischen Polyimid.
    JP2782769B2 (ja) * 1989-04-07 1998-08-06 宇部興産株式会社 有機物水溶液の浸透気化分離方法
    US5234813A (en) * 1989-05-17 1993-08-10 Actimed Laboratories, Inc. Method and device for metering of fluid samples and detection of analytes therein
    DE3922495A1 (de) * 1989-07-08 1991-01-17 Miles Inc Analyseverfahren fuer substanzen aus biologischen fluessigkeiten, insbesondere vollblut
    DE4015157A1 (de) 1990-05-11 1991-11-14 Miles Inc Asymetrische sandwich-membranen fuer diagnose-teststreifen
    DE4015589A1 (de) 1990-05-15 1991-11-21 Boehringer Mannheim Gmbh Vorrichtung und deren verwendung zur abtrennung von plasma aus vollblut
    US5187100A (en) * 1990-05-29 1993-02-16 Lifescan, Inc. Dispersion to limit penetration of aqueous solutions into a membrane
    JP2547664B2 (ja) * 1990-10-20 1996-10-23 富士写真フイルム株式会社 鉄イオン分析用乾式分析要素

    Also Published As

    Publication number Publication date
    JPH0772145A (ja) 1995-03-17
    EP0586789A3 (en) 1994-07-27
    DE59309881D1 (de) 1999-12-30
    JP2815773B2 (ja) 1998-10-27
    ATE186982T1 (de) 1999-12-15
    ES2141739T3 (es) 2000-04-01
    DE4212280A1 (de) 1993-10-14
    US6287867B1 (en) 2001-09-11
    EP0586789A2 (de) 1994-03-16

    Similar Documents

    Publication Publication Date Title
    DE19781288B4 (de) Opake Reaktionsmatrix zur Analyse von Vollblut
    DE3100156C2 (de)
    DE2332760C3 (de) Material für die quantitative spektrophotometrische Analyse einer Flüssigkeit
    EP0133895B1 (de) Erythrozyten-Rückhaltesubstrate
    EP0457183B1 (de) Vorrichtung und deren Verwendung zur Abtrennung von Plasma aus Vollblut
    EP0821234B1 (de) Diagnostischer Testträger mit mehrschichtigem Testfeld und Verfahren zur Bestimmung von Analyten mit dessen Hilfe
    EP0586789B1 (de) Gleichmässig verteilte Anreicherung einer in Lösung vorliegenden Substanz auf der feinporigen Seite einer asymmetrisch porösen Membran
    DE3329728C2 (de)
    DE3029579C2 (de) Verfahren und Mittel zur Abtrennung von Plasma oder Serum aus Vollblut
    EP0154839B1 (de) Testvorrichtung und Methode zum Nachweis einer Komponente einer flüssigen Probe
    EP0175990A2 (de) Membran für Reagenzträgerschichten, Verfahren zu deren Herstellung, sowie deren Verwendung in analytischen Mitteln und Analysenverfahren
    DE2717817A1 (de) Analytisches element
    DE2922958A1 (de) Mehrschichtiges integrales element zur chemischen analyse von blut
    DE2532918C3 (de) Integrales analytisches Element für die Analyse von Flüssigkeiten
    DE2801476A1 (de) Kolorimetrisches verfahren fuer die bestimmung von bilirubin
    DE3809523A1 (de) Verfahren zur herstellung von poroesen membranen, die damit hergestellten membranen und deren verwendung als traegermatrices in teststreifen
    DE3506365C2 (de)
    EP0995994B1 (de) Funktionsschichten mit hoher Präzision, Verfahren zu ihrer Herstellung und Teststreifen enthaltend diese Funktionsschichten
    DE3215983C2 (de)
    EP0995992B1 (de) Spreitschichten, Netzmittel zu ihrer Herstellung und deren Verwendung in Teststreifen
    EP0575364B1 (de) Testträger zur bestimmung eines analyten aus vollblut
    DE3202667A1 (de) Analyseneinheit
    EP1531331B1 (de) Verfahren zur Bestimmung von glycosyliertem Hämoglobin mittels einer Extraktionsschicht
    EP0457123B1 (de) Testträger für die analytische Bestimmung eines Bestandteils einer Probenflüssigkeit
    DE3433563A1 (de) Vorrichtung aus polymeren mit membranstruktur und eingelagerten feststoffpartikeln

    Legal Events

    Date Code Title Description
    PUAI Public reference made under article 153(3) epc to a published international application that has entered the european phase

    Free format text: ORIGINAL CODE: 0009012

    17P Request for examination filed

    Effective date: 19930406

    AK Designated contracting states

    Kind code of ref document: A2

    Designated state(s): AT BE CH DE DK ES FR GB GR IE IT LI LU NL PT SE

    PUAL Search report despatched

    Free format text: ORIGINAL CODE: 0009013

    AK Designated contracting states

    Kind code of ref document: A3

    Designated state(s): AT BE CH DE DK ES FR GB GR IE IT LI LU NL PT SE

    17Q First examination report despatched

    Effective date: 19960902

    RAP3 Party data changed (applicant data changed or rights of an application transferred)

    Owner name: ROCHE DIAGNOSTICS GMBH

    GRAG Despatch of communication of intention to grant

    Free format text: ORIGINAL CODE: EPIDOS AGRA

    GRAG Despatch of communication of intention to grant

    Free format text: ORIGINAL CODE: EPIDOS AGRA

    GRAH Despatch of communication of intention to grant a patent

    Free format text: ORIGINAL CODE: EPIDOS IGRA

    GRAH Despatch of communication of intention to grant a patent

    Free format text: ORIGINAL CODE: EPIDOS IGRA

    GRAA (expected) grant

    Free format text: ORIGINAL CODE: 0009210

    AK Designated contracting states

    Kind code of ref document: B1

    Designated state(s): AT BE CH DE DK ES FR GB GR IE IT LI LU NL PT SE

    PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: SE

    Free format text: THE PATENT HAS BEEN ANNULLED BY A DECISION OF A NATIONAL AUTHORITY

    Effective date: 19991124

    Ref country code: GR

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

    Effective date: 19991124

    REF Corresponds to:

    Ref document number: 186982

    Country of ref document: AT

    Date of ref document: 19991215

    Kind code of ref document: T

    REG Reference to a national code

    Ref country code: CH

    Ref legal event code: EP

    REF Corresponds to:

    Ref document number: 59309881

    Country of ref document: DE

    Date of ref document: 19991230

    REG Reference to a national code

    Ref country code: IE

    Ref legal event code: FG4D

    Free format text: GERMAN

    ITF It: translation for a ep patent filed

    Owner name: BIANCHETTI - BRACCO - MINOJA S.R.L.

    PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: PT

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF FAILURE TO SUBMIT A TRANSLATION OF THE DESCRIPTION OR TO PAY THE FEE WITHIN THE PRESCRIBED TIME-LIMIT

    Effective date: 20000224

    Ref country code: DK

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF FAILURE TO SUBMIT A TRANSLATION OF THE DESCRIPTION OR TO PAY THE FEE WITHIN THE PRESCRIBED TIME-LIMIT

    Effective date: 20000224

    ET Fr: translation filed
    REG Reference to a national code

    Ref country code: ES

    Ref legal event code: FG2A

    Ref document number: 2141739

    Country of ref document: ES

    Kind code of ref document: T3

    GBT Gb: translation of ep patent filed (gb section 77(6)(a)/1977)

    Effective date: 20000310

    PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: LU

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

    Effective date: 20000406

    Ref country code: AT

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

    Effective date: 20000406

    PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: LI

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

    Effective date: 20000430

    Ref country code: CH

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

    Effective date: 20000430

    Ref country code: BE

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

    Effective date: 20000430

    PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: IE

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

    Effective date: 20000719

    REG Reference to a national code

    Ref country code: IE

    Ref legal event code: FD4D

    PLBE No opposition filed within time limit

    Free format text: ORIGINAL CODE: 0009261

    STAA Information on the status of an ep patent application or granted ep patent

    Free format text: STATUS: NO OPPOSITION FILED WITHIN TIME LIMIT

    BERE Be: lapsed

    Owner name: ROCHE DIAGNOSTICS G.M.B.H.

    Effective date: 20000430

    26N No opposition filed
    REG Reference to a national code

    Ref country code: CH

    Ref legal event code: PL

    REG Reference to a national code

    Ref country code: GB

    Ref legal event code: IF02

    PGFP Annual fee paid to national office [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: GB

    Payment date: 20030402

    Year of fee payment: 11

    PGFP Annual fee paid to national office [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: FR

    Payment date: 20030408

    Year of fee payment: 11

    PGFP Annual fee paid to national office [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: DE

    Payment date: 20030417

    Year of fee payment: 11

    PGFP Annual fee paid to national office [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: NL

    Payment date: 20030429

    Year of fee payment: 11

    Ref country code: ES

    Payment date: 20030429

    Year of fee payment: 11

    PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: GB

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

    Effective date: 20040406

    PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: ES

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

    Effective date: 20040407

    PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: NL

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

    Effective date: 20041101

    PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: DE

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

    Effective date: 20041103

    GBPC Gb: european patent ceased through non-payment of renewal fee
    PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: FR

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES

    Effective date: 20041231

    NLV4 Nl: lapsed or anulled due to non-payment of the annual fee

    Effective date: 20041101

    REG Reference to a national code

    Ref country code: FR

    Ref legal event code: ST

    PG25 Lapsed in a contracting state [announced via postgrant information from national office to epo]

    Ref country code: IT

    Free format text: LAPSE BECAUSE OF NON-PAYMENT OF DUE FEES;WARNING: LAPSES OF ITALIAN PATENTS WITH EFFECTIVE DATE BEFORE 2007 MAY HAVE OCCURRED AT ANY TIME BEFORE 2007. THE CORRECT EFFECTIVE DATE MAY BE DIFFERENT FROM THE ONE RECORDED.

    Effective date: 20050406

    REG Reference to a national code

    Ref country code: ES

    Ref legal event code: FD2A

    Effective date: 20040407