DE69735739T2 - Variable Überwachung von elektroosmotischen und/oder elektroforetischen Kräften in einer in einem Fluidum enthaltenen Anordnung durch elektrische Kräfte - Google Patents

Variable Überwachung von elektroosmotischen und/oder elektroforetischen Kräften in einer in einem Fluidum enthaltenen Anordnung durch elektrische Kräfte Download PDF

Info

Publication number
DE69735739T2
DE69735739T2 DE69735739T DE69735739T DE69735739T2 DE 69735739 T2 DE69735739 T2 DE 69735739T2 DE 69735739 T DE69735739 T DE 69735739T DE 69735739 T DE69735739 T DE 69735739T DE 69735739 T2 DE69735739 T2 DE 69735739T2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
electrodes
channels
voltage
current
materials
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
DE69735739T
Other languages
English (en)
Other versions
DE69735739D1 (de
Inventor
Calvin Y.H. Porta Valley Chow
J Wallace Palo Alto Parce
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Caliper Life Sciences Inc
Original Assignee
Caliper Life Sciences Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=24722789&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=DE69735739(T2) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Caliper Life Sciences Inc filed Critical Caliper Life Sciences Inc
Application granted granted Critical
Publication of DE69735739D1 publication Critical patent/DE69735739D1/de
Publication of DE69735739T2 publication Critical patent/DE69735739T2/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N27/00Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/26Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
    • G01N27/416Systems
    • G01N27/447Systems using electrophoresis
    • G01N27/44756Apparatus specially adapted therefor
    • G01N27/44791Microapparatus
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N27/00Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/26Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
    • G01N27/416Systems
    • G01N27/447Systems using electrophoresis
    • G01N27/44704Details; Accessories
    • G01N27/44713Particularly adapted electric power supply
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N27/00Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/26Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
    • G01N27/416Systems
    • G01N27/447Systems using electrophoresis
    • G01N27/44704Details; Accessories
    • G01N27/44752Controlling the zeta potential, e.g. by wall coatings
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N27/00Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/26Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
    • G01N27/416Systems
    • G01N27/447Systems using electrophoresis
    • G01N27/44756Apparatus specially adapted therefor
    • G01N27/44773Multi-stage electrophoresis, e.g. two-dimensional electrophoresis
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S366/00Agitating
    • Y10S366/02Micromixers: segmented laminar flow with boundary mixing orthogonal to the direction of fluid propagation with or without geometry influences from the pathway
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10TTECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
    • Y10T29/00Metal working
    • Y10T29/49Method of mechanical manufacture
    • Y10T29/49002Electrical device making

Description

  • HINTERGRUND DER ERFINDUNG
  • Seit einiger Zeit besteht ein wachsendes Interesse an der Herstellung und Verwendung von Mikrofluidsystemen zur Erfassung von chemischen und biochemischen Informationen. Normalerweise mit der Halbleiter-Elektronikindustrie assoziierte Techniken, so wie Photolithographie, nasschemisches Ätzen etc., werden bei der Herstellung dieser Mikrofluidsysteme verwendet. Der Begriff "Mikrofluid-" bezieht sich auf ein System oder eine Vorrichtung mit Kanälen und Kammern, die im allgemeinen im Mikron- oder Submikron-Maßstab hergestellt werden, beispielsweise mit mindestens einer Querschnittsdimension im Bereich von etwa 0,1 μm bis etwa 500 μm. Frühere Diskussionen der Verwendung von Planchiptechnologie zur Herstellung von Mikrofluidsystemen sind bereitgestellt in Manz et al., Trends in Anal. Chem. (1990) 10(5):144-149 und Manz et al., Avd. in Chromatog. (1993) 33:1-66, die die Herstellung solcher Fluidvorrichtungen, insbesondere Mikrokapillarvorrichtungen, in Silicon- und Glassubstraten beschreiben.
  • Die Anwendungsmöglichkeiten von Mikrofluidsystemen sind unzählig. Beispielsweise beschreibt die Internationale Patentanmeldung WO 96/04547, veröffentlicht am 15. Februar 1996, die Verwendung von Mikrofluidsystemen für kapillare Elektrophorese, Flüssigchromatographie, Flussinjektionsanalyse und chemische Reaktion und Synthese. Eine verwandte Patentanmeldung, US-Anmeldung Nr. 671987 mit dem Titel "HIGH THROUGHPUT SCREENING ASSAY SYSTEMS IN MICROSCALE FLUIDIC DEVICES (Hochdurchsatz-Screeningassay-Systeme in miniaturisierten Fluidvorrichtungen)", eingereicht am 28. Juni 1996 von J. Wallace Parce et al. und dem gegenwärtigen Rechtsnachfolger übertragen, offenbart breit gefächerte Anwendungsmöglichkeiten von Mikrofluidsystemen zur sehr schnellen Analyse von Verbindungen hinsichtlich ihrer Auswirkungen auf verschiedene chemische und vorzugsweise biochemische Systeme. Der Begriff "biochemisches System" bezieht sich im allgemeinen auf eine chemische Wechselwirkung, die Moleküle des Typs involviert, der im allgemeinen in lebenden Organismen zu finden ist. Solche Wechselwirkungen schließen das gesamte Spektrum von katabolischen und anabolischen Reaktionen ein, die in lebenden Systemen vorkommen, einschließend enzymatische, Bindungs-, Signal- und andere Reaktionen. Biochemische Systeme von besonderem Interesse schließen beispielsweise ein: Rezeptor-Ligand-Wechselwirkungen, Enzym-Substrat-Wechselwirkungen, zelluläre Signalwege, Modell- Barrieren-Systeme (beispielsweise Zellen oder Membranfraktionen) involvierende Transportreaktionen zum Bioavailability-Screening sowie eine Vielzahl anderer allgemeiner Systeme.
  • Es wurden viele Verfahren zum Transport und zur Steuerung von Fluida, beispielsweise Proben, Analyten, Puffer und Reagenzien, innerhalb dieser Mikrofluidsysteme oder -vorrichtungen beschrieben. Ein Verfahren bewegt Fluida in im Mikromaßstab hergestellten Vorrichtungen mittels mechanischer Mikropumpen und -ventile innerhalb der Vorrichtung. Siehe die veröffentlichte UK-Patentanmeldung Nr. 2 248 891 (18.10.1990), die veröffentlichte Europäische Patentanmeldung Nr. 568 902 (02.05.1992), die US-Patente Nrs. 5,271,724 (21.08.1991) und 5,277,556 (03.07.1991). Siehe auch US-Patent Nr. 5,171,132 (21.12.1990), erteilt an Miyazaki et al. Ein anderes Verfahren verwendet akustische Energie, um Fluidproben innerhalb von Vorrichtungen mittels akustischer Strömungseffekte zu bewegen. Siehe die veröffentlichte PCT-Anmeldung Nr. 94/05414 von Northrup und White. Ein unkompliziertes Verfahren wendet externen Druck an, um Fluida innerhalb der Vorrichtung zu bewegen. Siehe beispielsweise die Diskussion in US-Patent Nr. 5,304,487, erteilt an Wilding et al.
  • Noch ein weiteres Verfahren verwendet elektrische Felder und die daraus resultierenden elektrokinetischen Kräfte, um Fluidmaterialien durch die Kanäle des Mikrofluidsystems zu bewegen. Siehe beispielsweise die veröffentlichte Europäische Patentanmeldung Nr. 544 969, die veröffentlichte Europäische Patentanmeldung Nr. 376 611 (30.12.1988) von Kovacs, Harrison et al., Anal. Chem. (1992) 64:1926-1932 und Manz et al. J. Chromatog. (1992) 593:253-258, US-Patent Nr. 5,126,022, erteilt an Soane. Elektrokinetische Kräfte haben die Vorteile der direkten Steuerung, der schnellen Reaktion und der Einfachheit. Dieses Verfahren zur Handhabung eines Mikrofluidsystems weist jedoch noch einige Nachteile auf.
  • Gegenwärtige Vorrichtungen verwenden ein Netzwerk von Kanälen in einem Substrat aus elektrisch isolierendem Material. Die Kanäle verbinden eine Reihe von Fluidreservoirs, die mit Hochspannungselektroden in Kontakt sind. Um Fluidmaterialien durch das Netzwerk von Kanälen zu bewegen, werden spezifische Spannungen gleichzeitig an die verschiedenen Elektroden angelegt. Die Bestimmung der Spannungswerte für jede Elektrode in einem System wird komplex, wenn man versucht, den Materialfluss in einem Kanal zu steuern, ohne dabei den Fluss in einem anderen Kanal zu beeinflussen. Beispielsweise ist in einer relativ simplen Anordnung von vier sich in einem Kreuzungspunkt schneidenden Kanälen mit Reservoirs und Elektroden an den Enden der Kanäle eine unabhängige Erhöhung des Fluidflusses zwischen zwei Reservoirs nicht mehr nur eine Frage der Erhöhung der Spannungsdifferenzen an den beiden Reservoirs. Die Spannungen an den anderen beiden Reservoirs müssen ebenfalls angepasst werden, wenn deren ursprünglicher Fluss und ursprüngliche Richtung beibehalten werden sollen. Des weiteren wird die Steuerung von Fluid durch die Kanäle immer komplexer, je größer die Anzahl an Kanälen, Kreuzungspunkten und Reservoirs wird.
  • Auch können die an den Elektroden in der Vorrichtung angelegten Spannungen hoch sein, beispielsweise bis zu einem Tausende von Volt/cm unterstützenden Level. Geregelte Hochspannungsausrüstungen sind teuer, sperrig und oftmals ungenau und es wird für jede Elektrode eine Hochspannungszufuhr benötigt. Folglich können die Kosten für ein Mikrofluidsystem von einer gewissen Komplexität unerschwinglich werden.
  • Diese Probleme des elektrokinetischen Transports in einem Mikrofluidsystem, das anstelle der Spannung einen anderen elektrischen Parameter verwendet, um die Steuerung des Materialflusses durch die Kanäle des Systems zu vereinfachen, werden durch die vorliegende Erfindung gelöst oder zumindest beträchtlich entschärft. Ein Hochdurchsatz-Mikrofluidsystem mit direkter, schneller und unkomplizierter Steuerung der Bewegung der Materialien durch die Kanäle des Mikrofluidsystems mit einem breiten Anwendungsspektrum, so wie auf den Gebieten der Chemie, Biochemie, Biotechnologie, Molekularbiologie sowie zahlreichen anderen Gebieten, ist möglich.
  • ZUSAMMENFASSUNG DER ERFINDUNG
  • Die vorliegende Erfindung stellt ein Mikrofluidsystem mit einer Vielzahl an miteinander verbundenen Kapillarkanälen gemäß Anspruch 15 und ein Verfahren zur Verwendung eines Mikrofluidsystems gemäß Anspruch 1 sowie eine Verwendung eines Substrats gemäß Anspruch 8 bereit.
  • Darüber hinaus ermöglicht die vorliegende Erfindung Zeitmultiplexing der Stromquellenspannungen an den Elektroden des Mikrofluidsystems zur präziseren und effizienteren Steuerung. Die Spannung an einer Elektrode kann durch Verändern der relativen Einschaltdauer der Verbindung der Elektrode mit der Stromquelle, Verändern der Spannung an der Elektrode während der relativen Einschaltdauer oder einer Kombination aus beidem gesteuert werden. Auf diese Weise kann eine Stromquelle mehr als eine Elektrode bedienen.
  • Die vorliegende Erfindung ermöglicht ebenfalls die direkte Kontrolle der Spannungen in den Kanälen im Mikrofluidsystem. Leitende Zuführungen auf der Oberfläche des Mikrofluidsystems sind in einem Kanal ausreichend schmal, um Elektrolyse zu verhindern. Die Zuführungen sind mit ebenfalls an der Oberfläche des Substrats gelegenen Spannungsteilerschaltkreisen verbunden. Der Teilerschaltkreis verringert die Ausgangsspannung des Kanal-H-Reservoirs, so dass spezielle Hochspannungs-Voltmeter nicht erforderlich sind. Die Teilerschaltkreise sind ebenfalls so gestaltet, dass sie vernachlässigbare Ströme aus den Kanälen ziehen und dadurch unerwünschte elektrochemische Effekte, beispielsweise Gaserzeugung, Reduktions-/Oxidationsreaktionen, minimieren.
  • KURZBESCHREIBUNG DER ZEICHNUNGEN
  • 1 zeigt eine repräsentative Darstellung eines Mikrofluidsystems;
  • 2A veranschaulicht einen beispielhaften Kanal eines Mikrofluidsystems wie aus 1; 2B repräsentiert den elektrischen Schaltkreis, der entlang des Kanals in 2A gebildet wird;
  • 3A ist ein Graph der Ausgangsspannung gegen die Zeit für eine Stromquelle aus dem Stand der Technik; 3B ist ein Graph der Ausgangsspannung gegen die Zeit für eine Zeitmultiplex-Stromquelle gemäß der vorliegenden Erfindung;
  • 4A ist eine repräsentative Darstellung eines Mikrofluidsystems, das mit im Zeitmultiplex-Modus angelegten Spannungen gemäß der vorliegenden Erfindung operiert; 4B ist ein Blockdiagramm und zeigt die Elemente einer Stromquelle aus 4A;
  • 5A ist eine repräsentative Darstellung eines Mikrofluidsystems mit spannungskontrollierten Knotenpunkten gemäß der vorliegenden Erfindung; 5B zeigt Details des Spannungsteilerschaltkreises aus 5A; und
  • 6A ist ein Blockdiagramm des Stromversorgungsgeräts aus 4B; 6B ist eine Verstärker-Blockdarstellung des Gleichstromumrichterblocks aus 6A.
  • DETAILLIERTE BESCHREIBUNG DER ERFINDUNG
  • 1 offenbart ein repräsentatives Diagramm eines Abschnitts eines beispielhaften Mikrofluidsystems 100, das gemäß der vorliegenden Erfindung arbeitet. Wie gezeigt, ist das gesamte System 100 in einem planen Substrat 102 gefertigt. Geeignete Substratmaterialien werden im allgemeinen aufgrund ihrer Kompatibilität mit den in der jeweiligen von der Vorrichtung auszuführenden Operation vorherrschenden Bedingungen ausgewählt. Solche Bedingungen können Extreme des pH-Werts, der Temperatur, der Ionenkonzentration und des Anlegens von elektrischen Feldern sein. Zusätzliche werden Substratmaterialien auch wegen ihrer Reaktivitätsträgheit gegenüber kritischen Komponenten einer von dem System durchzuführenden Analyse oder Synthese ausgewählt.
  • Das in 1 gezeigte System schließt eine Reihe von Kanälen 110, 112, 114 und 116 ein, die in die Oberfläche des Substrats 102 eingearbeitet sind. Wie in der Definition von "Mikrofluid" besprochen, weisen diese Kanäle typischerweise sehr kleine Querschnittsdimensionen auf. Für die speziellen nachfolgend besprochenen Anwendungen funktionieren Kanäle mit Tiefen von etwa 10 μm und Breiten von etwa 60 μm effektiv, wenngleich Abweichungen von diesen Dimensionen ebenfalls möglich sind. Das Mikrofluidsystem 100 transportiert die relevanten Materialien zu verschiedenen Zwecken, einschließlich dem der Analyse, des Testens, des Mischens mit anderen Materialien, der Untersuchung sowie Kombinationen dieser Operationen, durch die verschiedenen Kanäle des Substrats 102. Der Begriff "relevante Materialien" bezieht sich schlicht auf das Material von Interesse, so wie chemische oder biologische Verbindungen. Relevante Verbindungen können ein breites Spektrum verschiedener Verbindungen beinhalten, einschließlich chemischer Verbindungen, Gemische chemischer Verbindungen, beispielsweise Polysaccharide, kleine organische oder anorganische Moleküle, biologische Makromoleküle, beispielsweise Peptide, Proteine, Nukleinsäuren oder Extrakte aus biologischen Materialien, so wie Bakterien, Pflanzen, Pilze oder tierische Zellen oder Gewebe, natürlich vorkommend oder synthetisch hergestellt.
  • Geeignete Materialien schließen beispielsweise ein: Glas, Quarz, Keramik und Silikon sowie polymere Substrate, beispielsweise Kunststoffe. Bei leitenden oder halbleitenden Substraten sollte eine Isolierschicht auf dem Substrat sein. Dies ist wichtig, da sich das System elektroosmotischer Kräfte bedient, um Materialien im System zu bewegen, wie nachfolgend besprochen. Bei polymeren Substraten können die Substratmaterialien starr, halbstarr oder nicht starr, undurchsichtig, halbundurchsichtig oder transparent sein, je nach der Verwendung, für die sie vorgesehen sind. Beispielsweise werden Systeme, die ein optisches oder visuelles Detektionselement einschließen, im allgemeinen wenigstens teilweise aus transparenten Materialien gefertigt, um die Detektion zu ermöglichen oder zumindest zu erleichtern. Alternativ können für diese Arten von Detektionselementen transparente Fenster aus Glas oder Quarz beispielsweise in die Vorrichtung eingebaut werden. Zusätzlich können die polymeren Materialien lineare oder verzweigte Rückgrate aufweisen und sie können vernetzt oder unvernetzt sein. Beispiele für besonders bevorzugte polymere Materialien schließen beispielsweise ein: Polydimethylsiloxane (PDMS). Polyurethan, Polyvinylchlorid (PVC), Polystyrol, Polysulfon, Polycarbonat, Polymethylmethacrylat (PMMA) und dergleichen.
  • Die Einarbeitung dieser Kanäle und anderer Mikroelemente in die Oberfläche des Substrats 102 kann mittels einer Reihe von Mikrofabrikationstechniken erfolgen, die im Stand der Technik wohl bekannt sind. Beispielsweise können lithographische Techniken bei der Herstellung von Glas-, Quarz- oder Silikonsubstraten angewendet werden, beispielsweise mit in der Halbleiter herstellenden Industrie wohl bekannten Verfahren. Photolithographische Maskierung, Plasma- oder Nassätzung und andere Halbleiter verarbeitende Technologien definieren Mikroelemente in und auf den Substratoberflächen. Alternativ können Verfahren zur Mikro-Materialbearbeitung, so wie Laserbohrung, Mikromahlen und dergleichen angewendet werden. In ähnlicher Weise können bei polymeren Substraten ebenfalls wohl bekannte Techniken angewendet werden. Diese Techniken beinhalten Spritzgusstechniken oder Pressgussverfahren, womit große Anzahlen von Substraten hergestellt werden können, unter Verwendung von beispielsweise Rollwalzen zur Herstellung von großen Lagen von Mikrosubstraten oder Polymer-Mikrogusstechniken, worin das Substrat im Inneren einer mikro-materialbearbeiteten Form polymerisiert wird.
  • Neben dem Substrat 102 schließt das Mikrofluidsystem 100 ein zusätzliches planes Element ein (nicht gezeigt), welches das mit Kanälen durchzogene Substrat 102 so überlagert, dass die verschiedenen Kanäle umschlossen und fluid abgedichtet werden, um so Rohrleitungen zu bilden. Das plane Deckelement kann durch eine Vielzahl von Mitteln am Substrat befestigt sein, beispielsweise einschließend Heißkleber, Klebstoffe oder, bei bestimmten Substraten, beispielsweise Glas oder halbstarre oder nicht starre polymere Substrate, eine natürliche Adhäsion zwischen den beiden Komponenten. Das plane Deckelement kann zusätzlich mit Zugangsöffnungen und/oder Reservoirs zum Einbringen der verschiedenen Fluidelemente, die für ein bestimmtes Screening benötigt werden, versehen sein.
  • Das in 1 gezeigte System 100 beinhaltet auch die Reservoirs 104, 106 und 108, die an den Enden der Kanäle 114, 116 bzw. 110 angeordnet und fluid miteinander verbunden sind. Wie gezeigt, wird der Kanal 112 dazu verwendet, eine Vielzahl relevanter Materialien in die Vorrichtung einzubringen. Zu diesem Zweck ist der Kanal 112 fluid mit einer Quelle von großen Anzahlen von separaten relevanten Materialien verbunden, die einzeln in den Kanal 112 und nachfolgend in einen weiteren Kanal 110, beispielsweise zur elektrophoretischen Analyse, eingebracht werden. Die relevanten Materialien werden in fluiden Slug-Bereichen 120 mit vorbestimmten Ionenkonzentrationen transportiert. Die Bereiche sind durch Pufferbereiche mit veränderlichen Ionenkonzentrationen getrennt und werden in 1 von den Pufferbereichen 121 repräsentiert. Verwandte Patentanmeldungen, US-Anmeldung Nr. 08/671,986, eingereicht am 28. Juni 1996, und US-Anmeldung Nr. 08/760,446, eingereicht am 6. Dezember 1996, beide mit dem Titel "ELECTROPIPETTOR AND COMPENSATION MEANS FOR ELECTROPHORETIC BIAS" (Elektropipettiergerät und Kompensationsmittel für elektrophoretische Vorspannung), von J. Wallace Parce und Michael R. Knapp, und dem gegenwärtigen Rechtsnachfolger übertragen, erklären verschiedene Anordnungen von Slugs und Pufferbereichen mit hohen und niedrigen Ionenkonzentrationen beim Transport von relevanten Materialien mittels elektrokinetischer Kräfte.
  • Um Materialien durch die Kanäle 110, 112, 114 und 116 zu bewegen kann ein Spannungsregler verwendet werden, der in der Lage ist, selektierbare Spannungspegel gleichzeitig an jedes der Reservoirs, einschließlich der Erdung, anzulegen. Solch ein Spannungsregler kann unter Verwendung von multiplen Spannungsteilern und Relais ausgeführt sein, um die selektierbaren Spannungspegel zu erhalten. Alternativ können multiple unabhängige Spannungsquellen verwendet werden. Der Spannungsregler ist über eine Elektrode, die in einem jeden Reservoir positioniert oder eingearbeitet ist, elektrisch mit jedem der Reservoirs 104, 106 und 108 verbunden. Siehe beispielsweise die veröffentlichte Internationale Patentanmeldung Nr. WO 96/04547 von Ramsey.
  • Neben der Komplexität gibt es noch andere Probleme mit der Spannungsregelung in einem Mikrofluidsystem. 2A illustriert einen beispielhaften Kanal 130 zwischen zwei Reservoirs 132 und 134, die jeweils in Kontakt mit den Elektroden 133 und 135 stehen und mit elektrischen Leitungen verbunden sind, die als vom Substrat 128 wegführend gezeigt sind. Um das Beispiel realistischer zu gestalten, wird der Kanal 130 als mit zwei anderen Kanälen 136 und 138 verbunden gezeigt. Im Betrieb ist das Reservoir 132 eine Quelle für Slugs 120, die das relevante Material enthalten. Die Slugs 120 werden auf das Reservoir 134 zu bewegt, welches als ein Abfluss fungiert. Die Kanäle 136 und 138 stellen Pufferbereiche 121 bereit, um die Slugs 120 im Kanal 130 zu trennen.
  • Die unterschiedlichen Widerstände der Slugs 120 und der Pufferbereiche 121 im Kanal 130 erzeugen einen elektrischen Schaltkreis, der in diesem einfachen Beispiel symbolisch angedeutet ist. Die zwischen den beiden Elektroden 133 und 135 angelegte Spannung V ist:
    Figure 00080001
    worin I der Strom zwischen den beiden Elektroden 133 und 135 ist (unter der Annahme, dass kein Strom in 136 und 138 fließt) und R; der Widerstand der verschiedenen Slugs 120 und Pufferbereiche 121 ist.
  • Ein Spannungsregelungssystem ist vielen Faktoren unterworfen, die in die Funktion des Systems eingreifen können. Beispielsweise kann der Kontakt an der Schnittstelle zwischen einer Elektrode und Fluid eine Problemquelle sein. Verändert sich der effektive Widerstand des Elektrode-zu-Fluid-Kontakts aufgrund von beispielsweise verunreinigenden Substanzen, Blasen oder Oxidation, so verändert sich die an das Fluid angelegte Spannung. Mit V an den Elektroden angelegt, verursacht eine durch Blasenbildung auf der Elektrode bedingte Abnahme der die Lösung kontaktierenden Elektrodenoberfläche einen Anstieg des Widerstands von der Elektrode zur Lösung. Dies reduziert den Strom zwischen den Elektroden, was wiederum die induzierten elektroosmotischen und elektrophoretischen Kräfte im Kanal 130 reduziert.
  • Andere Probleme können sich auf den Stromfluss im Kanal auswirken. Unerwünschte Schwebstoffe können den Kanalwiderstand durch effektive Modifikation des Querschnittsbereichs des Kanals beeinflussen. Wieder, einhergehend mit einer Veränderung des Kanalwiderstands, wird der physikalische Stromfluss verändert.
  • Bei anderen Kanälen, so wie Kanäle 136 und 138, die mit dem beispielhaften Kanal 130 verbunden sind, können Dimensionsvariationen in der Geometrie der Kanäle im Substrat 102 die Arbeitsweise eines Spannungsregelungssystems ernsthaft beeinträchtigen. Beispielsweise könnte der Kreuzungspunkt für die Kanäle 130, 136 und 138 in Entfernung X von der Elektrode für das Reservoir am Ende von Kanal 136 (nicht gezeigt) und in Entfernung Y von der Elektrode für das Reservoir am Ende von Kanal 138 (nicht gezeigt) liegen. Durch eine geringfügige seitliche Fehlausrichtung im photolithographischen Prozess sind die Entfernungen X und Y nicht mehr die gleichen für das Mikrofluidsystem auf einem anderen Substrat. Der Spannungsregler muss von Substrat zu Substrat neu kalibriert werden – ein zeitaufwändiger und kostenintensiver Prozess – damit die Fluidbewegung am Kreuzungspunkt korrekt gesteuert werden kann.
  • Um diese Probleme zu vermeiden verwendet die vorliegende Erfindung elektrische Stromregelung im Mikrofluidsystem 100. Der elektrische Stromfluss an einer gegebene Elektrode steht in direkter Relation zum Ionenfluss entlang des Kanals/der Kanäle, die mit dem Reservoir, in dem die Elektrode platziert ist, verbunden sind. Dies steht in Kontrast zu der Notwendigkeit, Spannungen an verschiedenen Knotenpunkten entlang des Kanals in einem Spannungsregelungssystem zu bestimmen. Folglich sind die Spannungen an den Elektroden des Mikrofluidsystems 100 so eingestellt, dass sie auf die elektrischen Ströme ansprechen, die durch die verschiedenen Elektroden des Systems 100 fließen. Die Stromregelung ist weniger anfällig gegenüber Dimensionsabweichungen beim Herstellungsprozess des Mikrofluidsystems auf dem Substrat 102. Stromregelung gestattet erheblich vereinfachte Arbeitsschritte zum Pumpen, Leiten durch Ventile, Verteilen, Mischen und Aufkonzentrieren der relevanten Materialien und Pufferfluida in einem komplexen Mikrofluidsystem. Stromregelung wird ebenfalls beim Abschwächen von unerwünschten temperaturabhängigen Nebeneffekten innerhalb der Kanäle bevorzugt.
  • Selbstverständlich können neben dem elektrischen Strom, der eine direkte Messung des Ionenflusses zwischen Elektroden ermöglicht, andere mit dem Strom verbundene elektrische Parameter, so wie die Leistung, als eine Regelung für das Mikrofluidsystem 100 verwendet werden. Die Leistung bietet eine indirekte Messung des elektrischen Stroms durch eine Elektrode. Daher kann der physikalische Strom zwischen Elektroden (und der Ionenfluss) durch die Leistung, die durch die Elektroden fließt, kontrolliert werden.
  • Sogar mit einem wie oben beschriebenen Stromregelungssystem müssen an die Elektroden des Mikrofluidsystems immer noch hohe Spannungen angelegt werden. Um die Notwendigkeit kostenintensiver Stromquellen, die in der Lage sind, kontinuierliche und präzise Hochspannungen zu erzeugen, zu eliminieren, stellt die vorliegende Erfindung Zeit-Multiplex-Stromquellen bereit. Diese Zeit-Multiplex-Stromquellen reduzieren ebenfalls die Anzahl der für das System 100 benötigten Stromquellen, da eine Zeit-Multiplex-Stromquelle mehr als eine Elektrode auf einmal bedienen kann.
  • 3A illustriert die beispielhafte Ausgangsleistung einer Hochleistungsstromquelle, gegenwärtig verwendet in einem elektrokinetischen System. Die Ausgangsleistung zwischen zwei Elektroden über die Zeit liegt konstant bei 250 Volt. Im Gegensatz dazu illustriert 3B die Ausgangsleistung einer Stromquelle, die gemäß der vorliegenden Erfindung arbeitet. Um eine konstante Spannung von 250 Volt aufrecht zu erhalten, wird die Ausgangsspannung mit einer geviertelten relativen Einschaltdauer bei 1000 Volt Zeitmultigeplext. Über die Zeit gemittelt liegt die Ausgangsleistung der Zeit-Multiplex-Stromquelle bei 250 Volt, wie durch die durch den Graphen gezogene horizontale gepunktete Linie illustriert ist. Es ist zu beachten, dass, wenn die Spannung sich ändern muss, beispielsweise als Reaktion auf Stromregulierung, wie oben besprochen, sich die Ausgangsspannung der Zeit-Multiplex-Stromquelle ebenfalls durch eine Veränderung der angelegten Spannung oder durch eine Veränderung der relativen Einschaltdauer oder eine Kombination aus beidem verändern kann.
  • In Kanälen mit den hier beschriebenen Dimensionen kann der elektroosmotische Fluid-Fluss innerhalb von Mikrosekunden gestartet und angehalten werden. Daher führen Spannungsmodulationsfrequenzen unter einem Megahertz zu einer ruckartigen Bewegung der Fluida. Dies sollte aufgrund der in der Natur der elektroosmotischen Fluida liegenden idealen Strömungseigenschaften keine negativen Auswirkungen auf die Handhabung der Fluida haben. Da sich die meisten chemischen Misch-, Inkubations- und Trennungsereignisse innerhalb von 0,1 bis 100 Sekunden abspielen, könnten die wesentlich niedrigeren Frequenzen zur Spannungssteuerung akzeptabel sein. Als Faustregel gilt: die Modulationsperiode sollte weniger als 1% des kürzesten Schaltereignisses (beispielsweise Schalten des Flusses von einem Kanal zu einem anderen) in Anspruch nehmen, um die Misch- oder Pipettierungsfehler unter 1% zu halten. Für ein Schaltereignis von 0,1 Sekunde sollte die Spannungsmodulationsfrequenz bei 1 KHz oder darüber liegen.
  • 4A ist ein Blockdiagramm eines Multiplex-Stromquellensystems mit zwei Stromquellen 200 und 202 und einem Steuerblock 204 für ein beispielhaftes und einfaches Mikrofluidsystem mit einem Kanal 180, der sich mit den Kanälen 182, 184, 186 und 188 schneidet. Der Kanal 180 endet in den Reservoirs 179 und 181, jeweils mit den Elektroden 190 und 191. Der Kanal 182 endet mit einem Reservoir 183 mit einer Elektrode 193; der Kanal 184 endet mit einem Reservoir 185 mit einer Elektrode 195; der Kanal 186 mit Reservoir 187 mit einer Elektrode 197; und der Kanal 188 mit Reservoir 189 mit einer Elektrode 199.
  • Die Stromquellen 200 und 202 sind mit den verschiedenen Elektroden 190, 191, 193, 195, 197 und 199 des Mikrofluidsystems verbunden. Die Stromquelle 200 ist mit den drei Elektroden 190, 193 und 195 verbunden und die Stromquelle 202 ist mit den verbleibenden drei Elektroden 191, 197 und 199 verbunden. Der Steuerblock 204 ist mit jeder der Stromquellen 200 und 202 verbunden, um deren Arbeitschritte zu koordinieren. Um beispielsweise die Bewegungen der Fluida durch die Kanäle 182, 184, 186 und 188 zu steuern, müssen die Spannungen an den Elektroden 190, 191, 193, 195, 197 und 199 zeitlich korrekt geplant werden. Die Spannungen an den Elektroden verändern sich in Reaktion auf den elektrischen Stromfluss, wie oben beschrieben, wenn beispielsweise der Steuerblock 204 die Stromquellen 200 und 202 steuert.
  • Jede der Stromquellen 200 und 202 ist in Elementen organisiert, wie in 4B illustriert. Eine Steuereinheit 212 empfängt Steuersignale vom Steuerblock 204 und steuert den Betrieb einer Schalteinheit 214. Die Schalteinheit 214, die mit einer Stromquelleneinheit 216 verbunden ist, stellt Verbindungen der Stromquelleneinheit 216 zu den angeschlossenen Elektroden her oder unterbricht diese. Mit anderen Worten: die Schalteinheit 214 Zeitmultiplext die Leistung der Stromquelleneinheit 216 unter ihren angeschlossenen Elektroden. Die Stromquelleneinheit 216 ist ebenfalls mit der Steuereinheit 212 verbunden, die die Variation der Ausgangsleistung von der Stromquelleneinheit 216 zur Schalteinheit 214 steuert. In einer anderen Anordnung ist diese Verbindung zur Steuereinheit 212 nicht erforderlich, wenn die Stromquelleneinheit 216 eine konstante Spannung liefert und die gemittelte Spannung an einer Elektrode durch die Veränderung der relativen Verbindungsdauer durch die Schalteinheit 214 verändert wird.
  • 6A ist ein Blockdiagramm einer Stromquelle, die als die Stromquelleneinheit 216 in 4B verwendet werden könnte. Alternativ kann die dargestellte Stromquelle direkt mit einer Elektrode eines Mikrofluidsystems verbunden sein, wenn kein Zeit-Multiplexing angewendet wird. Die Stromquelle kann eine stabile Spannung an eine Elektrode liefern oder einen stabilen Strom liefern oder absenken.
  • Die Stromquelle besitzt einen Eingangsanschluss 240, der mit einer steuerbaren Referenzspannung von –5 bis +5 Volt versorgt wird, die in einem Ausgangsanschluss 241 schrittweise bis zu einer Größenordnung von Hunderten von Volt erhöht wird. Der Eingangsanschluss ist durch einen Widerstand 227 mit dem negativen Eingangsanschluss eines Eingangsoperationsverstärkers 230 verbunden. Der positive Eingangsanschluss eines Operationsverstärkers 230 ist geerdet und sein Ausgangsanschluss ist durch einen mit einem Widerstand 228 seriell geschalteten Rückkopplungskondensator 220 mit dem negativen Eingangsanschluss verbunden. Der Ausgangsanschluss ist ebenfalls mit einem Eingangsanschluss eines Gleichstromwandlers 231 verbunden. Ein zweiter Eingangsanschluss ist geerdet. Die Ausgangsseite des Wandlers 231, die die vom Verstärker 230 empfangene Spannung schrittweise erhöht, ist mit dem Ausgangsanschluss 241 der Stromquelle verbunden. Der zweite Ausgangsanschluss des Wandlers 231 ist durch einen Widerstand 222 geerdet.
  • Der Ausgangsanschluss 241 der Stromquelle ist ebenfalls durch zwei seriell geschaltete Widerstände 221 und 223 geerdet, die einen Spannungsteilerschaltkreis bilden. Der Knotenpunkt zwischen den beiden Widerständen 221 und 223 ist mit einem Eingangsanschluss eines Strom-/Spannungsbetriebsmodusschalters 234 verbunden. Der Knotenpunkt ist durch einen Widerstand 225 ebenfalls mit dem negativen Eingangsanschluss eines Rückkopplungs-Operationsverstärkers 232 verbunden. Der negative Eingangsanschluss ist durch einen Widerstand 224 ebenfalls mit dem Ausgangsanschluss des Wandlers 231 und durch einen Rückkopplungswiderstand 226 mit dem Ausgangsanschluss des Verstärkers 232 verbunden. Der Ausgangsanschluss des Verstärkers 232 ist ebenfalls mit einem zweiten Eingangsanschluss des Schalters 234 verbunden, dessen Ausgangsanschluss durch einen Widerstand 229 mit dem negativen Eingangsanschluss des Eingangsoperationsverstärkers 230 verbunden ist.
  • Der Schalter 234 reagiert auf ein Signal des Steuerungsterminals 242. Wie in 6A gezeigt, verbindet der Schalter 234 seinen Ausgangsanschluss entweder mit dem Ausgangsanschluss des Rückkopplungs-Operationsverstärkers 232 oder mit dem Spannungsteilerknotenpunkt zwischen den beiden Widerständen 221 und 223. Die Verbindung bestimmt, ob der Stromquellenschaltkreis im Spannungsmodus (Verbindung mit dem Spannungsteilerknotenpunkt) oder im Strommodus (Verbindung mit dem Ausgang des Rückkopplungs-Operationsverstärkers 232) arbeitet. Es ist zu beachten, dass der Widerstand 221 sehr groß ist, in etwa 15 MΩ, so dass die Spannung am Ausgangsanschluss 241 einfach rückgekoppelt werden kann, wenn die Stromquelle arbeitet.
  • Der Schaltkreis aus 6A kann in verschiedene Arbeitsblocks aufgeteilt werden. Der Operationsverstärker 230, die Widerstände 226 bis 228 und der Kondensator 220 sind Teile eines Mischblocks. Der Mischblock empfängt die steuerbare Referenzspannung Vref, bei der in etwa die Stromquelle arbeitet, am Eingangsanschluss 240 und eine Rückkopplungsspannung, wie nachstehend besprochen, um eine Ausgangsspannung, eine Kombination aus Vref und Rückkopplungsspannungen, für den Gleichstromwandler 231 zu erzeugen. Der Wandler 231, in 6B als Spannungsverstärker dargestellt, verstärkt lediglich die Spannung aus dem Operationsverstärker 230. Ein Ausgangsanschluss des Spannungsverstärkers ist mit dem Ausgangsanschluss 241 und einem Anschluss des Widerstands 221 verbunden. Der andere Ausgang des Spannungsverstärkers ist durch den Widerstand 222 geerdet. Die Widerstände 221 bis 223 können als Teile eines Rückkopplungsblocks betrachtet werden, der ebenfalls Widerstände 224 bis 226 und einen Operationsverstärker 232 aufweist. Der Schalter 234 ist ebenfalls Teil des Rückkopplungsblocks und ist mit dem zweiten Eingangsanschluss des Mischblocks verbunden, wie vorstehend beschrieben.
  • Im Betrieb weist der Mischblock den Operationsverstärker 230 auf, der als Summierverstärker mit den Widerständen 226 bis 228 verbunden ist. Mit dem Kondensator 220 in der Rückkopplungsschleife des Operationsverstärkers 230 ist die Ausgangsspannung des Operationsverstärkers 230 die Spannung, die aus der Summe (oder Differenz) der Referenzspannung Vref und der Rückkopplungsspannung aus dem Schalter 234 über die Zeit integrierte Spannung. Natürlich können die Referenzspannung Vref und die Rückkopplungsspannung durch die Werte der Widerstände 226 und 227 selektiv gewichtet werden. Der Kondensator 220 und der Verstärker 230 agieren ebenfalls als Filter, um die Hochfrequenzfluktuationen von der Stromquelle zu entfernen.
  • Das Ausgangssignal aus dem Operationsverstärker 230 kann mittels zusätzlicher Elemente (nicht gezeigt) konditioniert werden, beispielsweise korrigiert oder gepuffert. Nichtsdestoweniger kann zum besseren Verständnis der vorliegenden Erfindung VIN, die vom Gleichstromwandler 231 empfangene Spannung, gleich der Ausgangsspannung des Operationsverstärkers 230 angenommen werden. Wie in 6B gezeigt, wird VIN durch einen Zunahmefaktor A verstärkt und es wird die verstärkte Spannung AVIN am Ausgangsanschluss 241 erzeugt.
  • Der Rückkopplungsblock besitzt einen Spannungsteilerschaltkreis, der durch die Widerstände 221 und 223 gebildet wird, die zwischen dem Ausgangsanschluss 241 und der Erdung geschaltet sind. Die Spannung am Knotenpunkt zwischen den Widerständen 221 und 223 ist direkt proportional zur Spannung am Ausgangsanschluss 241. Wählt der Schalter 234 als Reaktion auf das Signal am Steuerungsanschluss 242 den Spannungsrückkopplungsmodus, so wird die Knotenpunktspannung direkt zurück an den Mischblock und den Operationsverstärker 230 gespeist. Die negative Rückkopplung stabilisiert den Ausgang am Anschluss 241. Ist beispielsweise die Spannung am Anschluss 241 hoch, so ist die Rückkopplungsspannung hoch. Dies führt wiederum zu einem Abfallen der Ausgangsspannung des Operationsverstärkers 230 und korrigiert somit die hohe Spannung am Ausgangsanschluss 241. Zur Kontrolle der Spannung am Ausgangsanschluss 241 wird der Knotenpunkt ebenfalls mit einem als ein einfacher Puffer konfigurierten Operationsverstärker 251 verbunden, um die Rückkopplungsspannung zu einem Kontrollschaltkreis (nicht gezeigt) zu leiten.
  • Der Rückkopplungsblock weist ebenfalls den Operationsverstärker 232 und die Widerstände 224 bis 226 auf, die so verbunden sind, dass sie den Operationsverstärker 232 als einen Summierverstärker konfigurieren. Ein Eingang zum Summierverstärker ist mit dem Knotenpunkt zwischen den Widerständen 221 und 223 verbunden. Der zweite Eingang ist mit dem Knotenpunkt zwischen dem geerdeten Widerstand 222 und dem zweiten Ausgangsanschluss des Gleichstromwandlers 231 verbunden. Der Summierverstärker misst die Differenz zwischen den Strommengen, die durch die seriell geschalteten Widerstände 221 und 223 und durch den Wandler 231 fließen (der gesamte Strom, der durch die Widerstände 222 und 224 fließt). Der Summierverstärker misst also die Strommenge, die durch den Ausgangsanschluss 241 übermittelt wird. Folglich wird der Ausgang des als Summierverstärker agierenden Operationsverstärkers 232 zum Mischblock übermittelt und der Stromquellenschaltkreis wird um die Strommenge, die durch den Stromquellenanschluss 241 an eine angeschlossene Elektrode eines Mikrofluidsystems übermittelt wird, stabilisiert, wenn der Schalter 234 auf Stromrückkopplungsmodus eingestellt ist.
  • Der Ausgang des Summierverstärkers ist ebenfalls mit einem Operationsverstärker 250 verbunden, der als einfacher Puffer konfiguriert ist, um die Ausgangsspannung an den Kontrollschaltkreis (nicht gezeigt) zu übermitteln. Von den Ausgängen der Operationsverstärker 250 und 251 kann der Kontrollschaltkreis die Spannung am Ausgangsanschluss 241 und den durch den Anschluss fließenden Strom messen. Dies ermöglicht dem Kontrollschaltkreis auch, die vom Stromquellenschaltkreis gelieferte Leistungsmenge zu bestimmen und zu regulieren.
  • Durch die Fähigkeit der beschriebenen Stromquelle, als eine variable Quelle zu agieren, ist es möglich, die Richtung des Fluidflusses durch die Mikrokanäle eines Mikrofluidsystem elektronisch zu verändern. Wenn alle Elektroden mit einer oder mehreren der oben beschriebenen Stromquellen verbunden sind, wird die Handhabung des Mikrofluidsystem erheblich verbessert und die gewünschten Bewegungen von Fluida durch das Netzwerk von Kanälen im System sind wesentlich flexibler.
  • Trotz des Betriebes als ein Stromsteuerungssystem ist es oftmals noch immer erforderlich, die Spannung an einem Knotenpunkt in einem Mikrofluidsystem zu bestimmen. Die vorliegende Erfindung stellt ebenfalls ein Mittel zur derartigen Spannungskontrolle bereit. Wie in 5A gezeigt, ist auf der Oberfläche eines Substrats 178 in der Nähe eines gewünschten Knotenpunkts 173 im Mikrofluidsystem eine elektrische Leitung 160 ausgebildet. Der Knotenpunkt 173 liegt am Kreuzungspunkt von Kanal 170, der an jedem seiner Enden die Reservoirs 169 und 171 aufweist, und den Kanälen 172 und 174. Das Ende von Kanal 174 weist ein Reservoir 175 auf, während das Ende des Kanals 172 (mit einem Reservoir) nicht gezeigt ist.
  • Die Leitung 160 wird vorzugsweise gebildet durch die Ablagerung eines leitfähigen Metalls oder einer leitfähigen Metalllegierung, vorzugsweise eines Edelmetalls so wie Gold auf Chrom oder Platin auf Titan, wie in integrierten Schaltkreisen verwendet. Mittels Halbleiter-Photolithographietechniken kann die Leitung 160 mit Breiten unter 1 μm definiert werden. Um Elektrolyse zu verhindern, ist die Breite der Leitung 160 im Kanal 170 ausreichend schmal, so dass die Spannung über der Leitung im Kanal 170 stets unter 1 Volt, vorzugsweise unter 0,1 Volt, liegen sollte.
  • Die im Mikrofluidsystem verwendeten Spannungen sind hoch. Ein Voltmeter, das die Spannung am Kanalknotenpunkt 173 direkt durch die Leitung 160 misst, muss eine sehr hohe Eingangsimpedanz aufweisen, um in der Lage zu sein, derart hohe Spannungen zu messen. Solche Voltmeter sind teuer. Des weiteren erhöht die Handhabung des Substrats der Mikrofluidsysteme die Möglichkeit der Verunreinigung. Eine solche Verunreinigung kann die Spannungen (und elektrischen Felder), die zur korrekten Handhabung der elektrokinetischen Kräfte in den Kanälen des Mikrofluidsystems erforderlich sind, ernsthaft beeinträchtigen.
  • Um diese Probleme und Kosten zu umgehen, wird die Leitung 160 mit einem Spannungsteilerschaltkreis 163 verbunden, der ebenfalls auf der Oberfläche des Substrats 178 ausgebildet ist. Die Ausgangsleistung der Spannungsteilerschaltkreises 163 wird von einer leitfähigen Ausgangsleitung 161 weitergeführt. Der Schaltkreis 163 ist durch eine leitfähige Leitung 162 ebenfalls mit einer Spannungsreferenz verbunden.
  • Der Spannungsteilerschaltkreis 163, in 5B detaillierter dargestellt, wird mittels standardisierter Halbleiterherstellungstechniken gebildet, mit den als ein Spannungsteilerschaltkreis geschalteten Widerständen 165 und 166. Die Leitung 160 ist mit dem Eingangsanschluss des Schaltkreises 163 verbunden, der ein Ende eines linearen Musters von Hochwiderstandsmaterialien, so wie nicht oder nur leicht gedoptes Polysilikon oder Aluminiumoxid, ist. Das andere Ende des linearen Musters ist mit der Referenzleitung 162 verbunden, die ebenfalls auf dem Substrat 168 ausgebildet ist und zu einer externen Referenzspannung, wahrscheinlich zur Erdung, führt. Wie beispielhaft gezeigt, wird die Spannung der Leitung 160 in einem 10:1-Verhältnis geteilt. Das lineare Muster ist in einen Widerstand 165 und einen Widerstand 166 aufgeteilt. Der Widerstand 165 weist neunmal mehr Schleifen auf als der Widerstand 166, d.h. der Widerstand des Widerstands 165 ist neunmal größer als der Widerstand des Widerstands 166. Natürlich können auch andere Verhältnisse verwendet werden; ein 1000:1-Verhältnis ist typisch. Die Ausgangsleitung 161, die zwischen den beiden Widerständen 165 und 166 geschaltet ist, führt zu einem externen Anschluss für das Ablesen von Niedrigspannung durch ein Voltmeter. Die Abdeckplatte schützt dann die Leitungen 160 bis 162, den Spannungsteilerschaltkreis 163 und die Oberfläche des Substrats vor Verunreinigung.
  • Wenngleich die vorangehende Erfindung zum Zwecke der Erläuterung und des besseren Verständnisses detailliert beschrieben wurde, wird dem Fachmann beim Lesen dieser Offenbarung klar sein, dass verschiedene Änderungen hinsichtlich Form oder Detail vorgenommen werden können, ohne vom tatsächlichen Umfang der Erfindung abzuweichen.

Claims (15)

  1. Verfahren zum Verwenden eines Mikrofluidsystems (100) mit einer Mehrzahl an miteinander verbundenen kapillaren Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) und einer Mehrzahl an Elektroden (133, 135, 188, 190, 191, 193, 195, 199), wobei jede von der Mehrzahl an Elektroden jeweils an unterschiedlichen Reservoirs der kapillaren Kanäle (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) angeordnet ist, um elektrische Felder in den kapillaren Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) zu erzeugen, um Materialien (120, 121) in einem Fluid elektrokinetisch durch die kapillaren Kanäle (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) zu bewegen, wobei das Verfahren gekennzeichnet ist durch: simultanes Anlegen von Potentialen an wenigstens drei der Elektroden (133, 135, 188, 190, 191, 193, 195, 199), wobei die Potentiale auf Änderungen bei einem Strom durch die wenigstens drei Elektroden ansprechen, um die Materialien (120, 123) in und durch eine oder mehrere Kreuzungsstellen der Mehrzahl an Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) des Systems (100) zu bewegen.
  2. Verfahren nach Anspruch 1, wobei das Mikrofluidsystem (100) drei Elektroden aufweist.
  3. Verfahren nach Anspruch 2, wobei der Schritt des Anlegens von Spannung ein Steuern der Spannungen umfasst, so dass der Strom im Wesentlichen konstant ist.
  4. Verfahren nach Anspruch 1, wobei die zu bewegenden Materialien (120, 121) geladen sind und sich die geladenen Materialien (120, 121) zu und von den Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) des Systems (100) mittels Elektrophorese bewegen.
  5. Verfahren nach Anspruch 1, wobei sich die zu bewegenden Materialien (120, 121) in einem Fluid befinden, und wobei der Schritt des Anlegens zu einer elektroosmotischen Bewegung des die Materialien (120, 121) enthaltenden Fluids zu und von den Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) des Systems (100) führt.
  6. Verfahren nach Anspruch 1, wobei die Mehrzahl an miteinander verbundenen kapillaren Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) wenigstens eine Kanalkreuzungsstelle einschließt, und die an die wenigstens drei Elektroden angelegten Spannungen Material (120, 121) in die Kreuzungsstelle aus Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) bewegt, die mit den wenigstens drei Elektroden verbunden sind.
  7. Verfahren nach Anspruch 1, wobei der Schritt des Anlegens weiter Steuern der an die wenigstens drei Elektroden angelegten Spannungen umfasst, so dass ein Strom zwischen einer der wenigstens drei Elektroden und einer anderen der wenigstens drei Elektroden im Wesentlichen konstant gehalten wird.
  8. Verwendung eines Substrates (102, 128, 178) mit einer Mehrzahl an miteinander verbundenen kapillaren Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) und einer Mehrzahl an Elektroden (133, 135, 188, 190, 191, 193, 195, 199), wobei jede von der Mehrzahl an Elektroden jeweils an unterschiedlichen Reservoirs der kapillaren Kanäle (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) angeordnet ist, um elektrische Felder in den kapillaren Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) zu erzeugen, um Materialien (120, 121) in einem Fluid durch die kapillaren Kanäle (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) elektrokinetisch zu bewegen, wobei die Verwendung gekennzeichnet ist durch simultanes Anlegen von Potentialen an wenigstens drei der Elektroden (133, 135, 188, 190, 191, 193, 195, 199), wobei die Potentiale auf Änderungen bei einem Strom durch die wenigstens drei Elektroden ansprechen, um die Materialien (120, 121) in und durch eine oder mehrere Kreuzungsstellen der Mehrzahl an Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) des Systems zu bewegen.
  9. Verwendung nach Anspruch 8, wobei die Spannungen simultan an mehr als drei der zugehörigen Elektroden angelegt wird.
  10. Verwendung nach Anspruch 9, wobei die Spannungen so gesteuert werden, dass der Strom im Wesentlichen konstant ist.
  11. Verwendung nach Anspruch 8, wobei die Materialien (120, 121) geladen sind und sich die Materialien (120, 121) zu und von den Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) mittels Elektrophorese bewegen.
  12. Verwendung nach Anspruch 8, wobei die Spannungen angelegt werden zur elektroosmotischen Bewegung des die Materialien (120, 121) enthaltenden Fluids zu und von den Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188).
  13. Verwendung nach Anspruch 8, wobei die Mehrzahl an miteinander verbundenen Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) wenigstens eine Kanalkreuzungsstelle einschließt, die Spannungen an die wenigstens drei Elektroden angelegt sind. um das Material (120, 121) in die Kreuzungsstelle aus Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) zu bewegen, die mit den wenigstens drei Elektroden verbunden sind.
  14. Verwendung nach Anspruch 8, wobei der Schritt des Anlegens von Spannung weiter ein Steuern der an die wenigstens drei Elektroden angelegten Spannungen umfasst, so dass ein Strom zwischen einer der wenigstens drei Elektroden und einer anderen der wenigstens drei Elektroden im Wesentlichen konstant gehalten wird.
  15. Mikrofluidsystem (100), umfassend ein Substrat mit einer Mehrzahl an miteinander verbundenen kapillaren Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) und einer Mehrzahl an Elektroden (133, 135, 188, 190, 191, 193, 195, 199), wobei jede von der Mehrzahl an Elektroden (133, 135, 188, 190, 191, 193, 195, 199) jeweils an unterschiedlichen Reservoirs der kapillaren Kanäle (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) angeordnet ist, um elektrische Felder in den kapillaren Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) zu erzeugen, um Materialien (120, 121) in einem Fluid elektrokinetisch durch die kapillaren Kanäle (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) zu bewegen, gekennzeichnet durch Mittel zum Messen von elektrischem Strom und Mittel zum simultanen Anlegen von Potentialen an wenigstens drei der Elektroden (133, 135, 188, 190, 191, 193, 195, 199), wobei die Potentiale auf Änderungen bei einem Strom durch die wenigstens drei Elektroden ansprechen, um die Materialien (120, 123) in und durch eine oder mehrere Kreuzungsstellen der Mehrzahl an Kanälen (110, 112, 114, 116, 130, 136, 138, 170, 172, 174, 180, 182, 184, 186, 188) des Systems (100) zu bewegen.
DE69735739T 1996-07-03 1997-07-03 Variable Überwachung von elektroosmotischen und/oder elektroforetischen Kräften in einer in einem Fluidum enthaltenen Anordnung durch elektrische Kräfte Expired - Lifetime DE69735739T2 (de)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US678436 1996-07-03
US08/678,436 US5800690A (en) 1996-07-03 1996-07-03 Variable control of electroosmotic and/or electrophoretic forces within a fluid-containing structure via electrical forces

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE69735739D1 DE69735739D1 (de) 2006-06-01
DE69735739T2 true DE69735739T2 (de) 2007-05-10

Family

ID=24722789

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE69735739T Expired - Lifetime DE69735739T2 (de) 1996-07-03 1997-07-03 Variable Überwachung von elektroosmotischen und/oder elektroforetischen Kräften in einer in einem Fluidum enthaltenen Anordnung durch elektrische Kräfte

Country Status (13)

Country Link
US (3) US5800690A (de)
EP (3) EP0909386A4 (de)
JP (1) JP3496156B2 (de)
CN (1) CN1143129C (de)
AT (1) ATE324584T1 (de)
AU (1) AU718697C (de)
BR (1) BR9710193A (de)
CA (1) CA2258699C (de)
DE (1) DE69735739T2 (de)
NZ (1) NZ333438A (de)
TW (1) TW345683B (de)
WO (1) WO1998000707A1 (de)
ZA (1) ZA975948B (de)

Families Citing this family (392)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5770029A (en) * 1996-07-30 1998-06-23 Soane Biosciences Integrated electrophoretic microdevices
US6048734A (en) 1995-09-15 2000-04-11 The Regents Of The University Of Michigan Thermal microvalves in a fluid flow method
US5942443A (en) * 1996-06-28 1999-08-24 Caliper Technologies Corporation High throughput screening assay systems in microscale fluidic devices
US5885470A (en) 1997-04-14 1999-03-23 Caliper Technologies Corporation Controlled fluid transport in microfabricated polymeric substrates
WO1998000231A1 (en) 1996-06-28 1998-01-08 Caliper Technologies Corporation High-throughput screening assay systems in microscale fluidic devices
US5800690A (en) 1996-07-03 1998-09-01 Caliper Technologies Corporation Variable control of electroosmotic and/or electrophoretic forces within a fluid-containing structure via electrical forces
US5699157A (en) * 1996-07-16 1997-12-16 Caliper Technologies Corp. Fourier detection of species migrating in a microchannel
US6074827A (en) 1996-07-30 2000-06-13 Aclara Biosciences, Inc. Microfluidic method for nucleic acid purification and processing
US6221654B1 (en) 1996-09-25 2001-04-24 California Institute Of Technology Method and apparatus for analysis and sorting of polynucleotides based on size
US6465257B1 (en) 1996-11-19 2002-10-15 Caliper Technologies Corp. Microfluidic systems
US6447727B1 (en) * 1996-11-19 2002-09-10 Caliper Technologies Corp. Microfluidic systems
US6235471B1 (en) 1997-04-04 2001-05-22 Caliper Technologies Corp. Closed-loop biochemical analyzers
US5964995A (en) 1997-04-04 1999-10-12 Caliper Technologies Corp. Methods and systems for enhanced fluid transport
US6391622B1 (en) * 1997-04-04 2002-05-21 Caliper Technologies Corp. Closed-loop biochemical analyzers
EP0988529B1 (de) * 1997-04-25 2013-06-12 Caliper Life Sciences, Inc. Mikrofluidische geräte mit verbesserten kanalgeometrien
US5976336A (en) * 1997-04-25 1999-11-02 Caliper Technologies Corp. Microfluidic devices incorporating improved channel geometries
US7033474B1 (en) 1997-04-25 2006-04-25 Caliper Life Sciences, Inc. Microfluidic devices incorporating improved channel geometries
EP1021566A4 (de) 1997-06-09 2002-06-19 Caliper Techn Corp Vorrichtung und verfahren zum richtigstellen von verschiedenen geschwindigkeitenin mikrofluidischen systemen
US6425972B1 (en) 1997-06-18 2002-07-30 Calipher Technologies Corp. Methods of manufacturing microfabricated substrates
US5900130A (en) * 1997-06-18 1999-05-04 Alcara Biosciences, Inc. Method for sample injection in microchannel device
US6001231A (en) 1997-07-15 1999-12-14 Caliper Technologies Corp. Methods and systems for monitoring and controlling fluid flow rates in microfluidic systems
US5989402A (en) * 1997-08-29 1999-11-23 Caliper Technologies Corp. Controller/detector interfaces for microfluidic systems
US5965410A (en) * 1997-09-02 1999-10-12 Caliper Technologies Corp. Electrical current for controlling fluid parameters in microchannels
WO1999012016A1 (en) * 1997-09-02 1999-03-11 Caliper Technologies Corporation Microfluidic system with electrofluidic and electrothermal controls
US6833242B2 (en) * 1997-09-23 2004-12-21 California Institute Of Technology Methods for detecting and sorting polynucleotides based on size
US6540895B1 (en) 1997-09-23 2003-04-01 California Institute Of Technology Microfabricated cell sorter for chemical and biological materials
US7214298B2 (en) * 1997-09-23 2007-05-08 California Institute Of Technology Microfabricated cell sorter
US6143152A (en) * 1997-11-07 2000-11-07 The Regents Of The University Of California Microfabricated capillary array electrophoresis device and method
US6174675B1 (en) 1997-11-25 2001-01-16 Caliper Technologies Corp. Electrical current for controlling fluid parameters in microchannels
US6857449B1 (en) 1998-01-20 2005-02-22 Caliper Life Sciences, Inc. Multi-layer microfluidic devices
US6167910B1 (en) 1998-01-20 2001-01-02 Caliper Technologies Corp. Multi-layer microfluidic devices
US6251343B1 (en) 1998-02-24 2001-06-26 Caliper Technologies Corp. Microfluidic devices and systems incorporating cover layers
US7497994B2 (en) * 1998-02-24 2009-03-03 Khushroo Gandhi Microfluidic devices and systems incorporating cover layers
US6756019B1 (en) 1998-02-24 2004-06-29 Caliper Technologies Corp. Microfluidic devices and systems incorporating cover layers
US6123798A (en) * 1998-05-06 2000-09-26 Caliper Technologies Corp. Methods of fabricating polymeric structures incorporating microscale fluidic elements
US6306590B1 (en) * 1998-06-08 2001-10-23 Caliper Technologies Corp. Microfluidic matrix localization apparatus and methods
WO1999064836A1 (en) * 1998-06-08 1999-12-16 Caliper Technologies Corp. Microfluidic devices, systems and methods for performing integrated reactions and separations
US6540896B1 (en) 1998-08-05 2003-04-01 Caliper Technologies Corp. Open-Field serial to parallel converter
US6447724B1 (en) 1998-08-11 2002-09-10 Caliper Technologies Corp. DNA sequencing using multiple fluorescent labels being distinguishable by their decay times
US6716394B2 (en) 1998-08-11 2004-04-06 Caliper Technologies Corp. DNA sequencing using multiple fluorescent labels being distinguishable by their decay times
US6821402B1 (en) 1998-09-16 2004-11-23 Applera Corporation Spectral calibration of fluorescent polynucleotide separation apparatus
US6149787A (en) * 1998-10-14 2000-11-21 Caliper Technologies Corp. External material accession systems and methods
NL1010327C2 (nl) * 1998-10-15 2000-04-18 Univ Twente Inrichting en werkwijze voor het besturen van een vloeistofstroom.
US6217731B1 (en) * 1998-10-21 2001-04-17 Spectrumedix Corporation Method and apparatus for monitoring and displaying the status of a parallel capillary electrophoresis device
US6086740A (en) 1998-10-29 2000-07-11 Caliper Technologies Corp. Multiplexed microfluidic devices and systems
US6203683B1 (en) 1998-11-09 2001-03-20 Princeton University Electrodynamically focused thermal cycling device
US6150119A (en) * 1999-01-19 2000-11-21 Caliper Technologies Corp. Optimized high-throughput analytical system
US6416642B1 (en) * 1999-01-21 2002-07-09 Caliper Technologies Corp. Method and apparatus for continuous liquid flow in microscale channels using pressure injection, wicking, and electrokinetic injection
US20020019059A1 (en) * 1999-01-28 2002-02-14 Calvin Y.H. Chow Devices, systems and methods for time domain multiplexing of reagents
JP4515640B2 (ja) 1999-02-02 2010-08-04 カリパー・ライフ・サイエンシズ・インク. タンパク質特性決定方法、装置及びシステム
US6294063B1 (en) * 1999-02-12 2001-09-25 Board Of Regents, The University Of Texas System Method and apparatus for programmable fluidic processing
AU3372800A (en) * 1999-02-23 2000-09-14 Caliper Technologies Corporation Manipulation of microparticles in microfluidic systems
WO2000050871A1 (en) * 1999-02-26 2000-08-31 Orchid Biosciences, Inc. Microstructures for use in biological assays and reactions
US6749814B1 (en) 1999-03-03 2004-06-15 Symyx Technologies, Inc. Chemical processing microsystems comprising parallel flow microreactors and methods for using same
US6503359B2 (en) 1999-03-05 2003-01-07 Burstein Technologies, Inc. Monomolecular adhesion methods for manufacturing microfabricated multilaminate devices
US6326083B1 (en) * 1999-03-08 2001-12-04 Calipher Technologies Corp. Surface coating for microfluidic devices that incorporate a biopolymer resistant moiety
US6171850B1 (en) 1999-03-08 2001-01-09 Caliper Technologies Corp. Integrated devices and systems for performing temperature controlled reactions and analyses
US6148508A (en) 1999-03-12 2000-11-21 Caliper Technologies Corp. Method of making a capillary for electrokinetic transport of materials
CN1181337C (zh) 2000-08-08 2004-12-22 清华大学 微流体系统中实体分子的操纵方法及相关试剂盒
US6500323B1 (en) 1999-03-26 2002-12-31 Caliper Technologies Corp. Methods and software for designing microfluidic devices
US6303343B1 (en) 1999-04-06 2001-10-16 Caliper Technologies Corp. Inefficient fast PCR
US6322683B1 (en) * 1999-04-14 2001-11-27 Caliper Technologies Corp. Alignment of multicomponent microfabricated structures
US6270641B1 (en) 1999-04-26 2001-08-07 Sandia Corporation Method and apparatus for reducing sample dispersion in turns and junctions of microchannel systems
US6410255B1 (en) * 1999-05-05 2002-06-25 Aurora Biosciences Corporation Optical probes and assays
US6458259B1 (en) 1999-05-11 2002-10-01 Caliper Technologies Corp. Prevention of surface adsorption in microchannels by application of electric current during pressure-induced flow
US6592821B1 (en) 1999-05-17 2003-07-15 Caliper Technologies Corp. Focusing of microparticles in microfluidic systems
WO2000070080A1 (en) 1999-05-17 2000-11-23 Caliper Technologies Corp. Focusing of microparticles in microfluidic systems
US6485690B1 (en) 1999-05-27 2002-11-26 Orchid Biosciences, Inc. Multiple fluid sample processor and system
EP1185871A4 (de) 1999-06-01 2003-01-15 Caliper Techn Corp Assays im kleinstformat und mikrofluidische vorrichtungen für aktivitäten von transportern, gradienten und bindungsassays
US6635163B1 (en) 1999-06-01 2003-10-21 Cornell Research Foundation, Inc. Entropic trapping and sieving of molecules
US6406605B1 (en) 1999-06-01 2002-06-18 Ysi Incorporated Electroosmotic flow controlled microfluidic devices
JP2003501639A (ja) * 1999-06-03 2003-01-14 ユニバーシティ オブ ワシントン 横断電気泳動および等電点電気泳動法のための微小流体デバイス
DE19927535B4 (de) * 1999-06-16 2004-06-17 Merck Patent Gmbh Miniaturisiertes Analysensystem mit Vorrichtung zum Ausschleusen von Substanzen
AU6068300A (en) 1999-07-06 2001-01-22 Caliper Technologies Corporation Microfluidic systems and methods for determining modulator kinetics
US7517442B1 (en) 1999-08-09 2009-04-14 Life Technologies Corporation Facile method and apparatus for the analysis of biological macromolecules in two dimensions using common and familiar electrophoresis formats
US6495104B1 (en) 1999-08-19 2002-12-17 Caliper Technologies Corp. Indicator components for microfluidic systems
US6858185B1 (en) 1999-08-25 2005-02-22 Caliper Life Sciences, Inc. Dilutions in high throughput systems with a single vacuum source
US6613581B1 (en) 1999-08-26 2003-09-02 Caliper Technologies Corp. Microfluidic analytic detection assays, devices, and integrated systems
AU7101000A (en) 1999-09-10 2001-04-10 Caliper Technologies Corporation Microfabrication methods and devices
US6662439B1 (en) 1999-10-04 2003-12-16 Roche Diagnostics Corporation Laser defined features for patterned laminates and electrodes
US7073246B2 (en) 1999-10-04 2006-07-11 Roche Diagnostics Operations, Inc. Method of making a biosensor
US6645359B1 (en) 2000-10-06 2003-11-11 Roche Diagnostics Corporation Biosensor
US6537771B1 (en) 1999-10-08 2003-03-25 Caliper Technologies Corp. Use of nernstein voltage sensitive dyes in measuring transmembrane voltage
DE19949551C2 (de) * 1999-10-14 2001-12-13 Agilent Technologies Inc Mikrofluidischer Mikrochip, Energieversorgungseinrichtung und Verfahren zum Betrieb eines mikrofluidischen Mikrochips
US6386014B1 (en) 1999-11-18 2002-05-14 Eagle Research Corporation Energy measurement device for flowing gas using microminiature gas chromatograph
US6271038B1 (en) 1999-12-15 2001-08-07 Glaxo Wellcome Inc. Methods for high throughout determination and ranking of formulations and solubility
US6468761B2 (en) 2000-01-07 2002-10-22 Caliper Technologies, Corp. Microfluidic in-line labeling method for continuous-flow protease inhibition analysis
US7037416B2 (en) * 2000-01-14 2006-05-02 Caliper Life Sciences, Inc. Method for monitoring flow rate using fluorescent markers
US20040108207A1 (en) * 2000-02-11 2004-06-10 Aclara Biosciences, Inc. Injection and separation system and method employing transient isotachophoretic stacking
US6685813B2 (en) 2000-02-11 2004-02-03 Aclara Biosciences, Inc. Tandem isotachophoresis/zone electrophoresis method and system
US20020189946A1 (en) * 2000-02-11 2002-12-19 Aclara Biosciences, Inc. Microfluidic injection and separation system and method
EP1255984B1 (de) 2000-02-11 2009-10-07 Aclara BioSciences, Inc. Mikrofluidische vorrichtung mit einer flüssigproben-injektionseinrichtung und verwendungsverfahren
DK173796B1 (da) * 2000-02-16 2001-11-05 Nkt Res As Fremgangsmåde til styring af strømning i et strømingssystem
US6681616B2 (en) 2000-02-23 2004-01-27 Caliper Technologies Corp. Microfluidic viscometer
AU2001249071B2 (en) * 2000-02-23 2005-09-08 Caliper Life Sciences, Inc. Multi-reservoir pressure control system
US7040144B2 (en) * 2000-02-23 2006-05-09 Caliper Life Sciences, Inc. Microfluidic viscometer
WO2001062919A1 (en) * 2000-02-23 2001-08-30 Aurora Biosciences Corporation Modified fluorescent proteins
AU2001240040A1 (en) * 2000-03-03 2001-09-17 California Institute Of Technology Combinatorial array for nucleic acid analysis
EP1285259A1 (de) * 2000-03-10 2003-02-26 DNA Sciences, Inc. Querkanaleinrichtung für die serielle probeneinspeisung
US20030186426A1 (en) * 2000-03-15 2003-10-02 The Regents Of The University Of California Multichannel flow cell for interacting single optically trapped, DNA molecules with different chemical species
US6749735B1 (en) 2000-03-16 2004-06-15 David Le Febre Electromobility focusing controlled channel electrophoresis system
US7141152B2 (en) * 2000-03-16 2006-11-28 Le Febre David A Analyte species separation system
US20020012971A1 (en) * 2000-03-20 2002-01-31 Mehta Tammy Burd PCR compatible nucleic acid sieving medium
US6481453B1 (en) * 2000-04-14 2002-11-19 Nanostream, Inc. Microfluidic branch metering systems and methods
US6733645B1 (en) 2000-04-18 2004-05-11 Caliper Technologies Corp. Total analyte quantitation
US6413792B1 (en) * 2000-04-24 2002-07-02 Eagle Research Development, Llc Ultra-fast nucleic acid sequencing device and a method for making and using the same
US8232582B2 (en) 2000-04-24 2012-07-31 Life Technologies Corporation Ultra-fast nucleic acid sequencing device and a method for making and using the same
EP1281002A4 (de) 2000-05-11 2006-08-09 Caliper Life Sciences Inc Mikrofluidische einrichtungen und methoden zur beeinflussung des strömungswiderstandes und elektrischen widerstandes mit hilfe von viskositätssteigernden zusätzen
AU6152301A (en) * 2000-05-12 2001-11-26 Caliper Techn Corp Detection of nucleic acid hybridization by fluorescence polarization
US7351376B1 (en) * 2000-06-05 2008-04-01 California Institute Of Technology Integrated active flux microfluidic devices and methods
US20020012905A1 (en) 2000-06-14 2002-01-31 Snodgrass H. Ralph Toxicity typing using liver stem cells
US6632400B1 (en) * 2000-06-22 2003-10-14 Agilent Technologies, Inc. Integrated microfluidic and electronic components
AU2001273057A1 (en) 2000-06-27 2002-01-08 Fluidigm Corporation A microfluidic design automation method and system
US7192559B2 (en) * 2000-08-03 2007-03-20 Caliper Life Sciences, Inc. Methods and devices for high throughput fluid delivery
CA2417341A1 (en) * 2000-08-08 2002-02-14 Jing Cheng Methods for manipulating moieties in microfluidic systems
US6902313B2 (en) * 2000-08-10 2005-06-07 University Of California Micro chaotic mixer
DE10141674A1 (de) * 2000-09-01 2002-03-14 Henkel Kgaa Reaktionsklebstoff mit mindestens einer mikroverkapselten Komponente
EP1317569B1 (de) * 2000-09-14 2009-11-18 Caliper Life Sciences, Inc. MIKROFLUIDISCHE VORRICHTUNGEN UND METHODEN UM TEMPERATUR-VERMITTELTE REAKTIONEN DURCHZUFüHREN
CN100495030C (zh) 2000-09-30 2009-06-03 清华大学 多力操纵装置及其应用
AU1189702A (en) 2000-10-13 2002-04-22 Fluidigm Corp Microfluidic device based sample injection system for analytical devices
US7121097B2 (en) 2001-01-16 2006-10-17 Catalytica Energy Systems, Inc. Control strategy for flexible catalytic combustion system
US6718772B2 (en) 2000-10-27 2004-04-13 Catalytica Energy Systems, Inc. Method of thermal NOx reduction in catalytic combustion systems
US20050011761A1 (en) * 2000-10-31 2005-01-20 Caliper Technologies Corp. Microfluidic methods, devices and systems for in situ material concentration
JP2004513342A (ja) * 2000-10-31 2004-04-30 カリパー・テクノロジーズ・コープ. 現場で材料を濃縮するミクロ流体方法、装置及びシステム
US20030057092A1 (en) * 2000-10-31 2003-03-27 Caliper Technologies Corp. Microfluidic methods, devices and systems for in situ material concentration
US6540890B1 (en) * 2000-11-01 2003-04-01 Roche Diagnostics Corporation Biosensor
US20090118139A1 (en) 2000-11-07 2009-05-07 Caliper Life Sciences, Inc. Microfluidic method and system for enzyme inhibition activity screening
JP4184078B2 (ja) * 2000-11-09 2008-11-19 コーニンクレッカ フィリップス エレクトロニクス エヌ ヴィ マトリックスアドレッシングの手段により制御可能な流動体レベルを伴う多重の流動体要素
US8900811B2 (en) 2000-11-16 2014-12-02 Caliper Life Sciences, Inc. Method and apparatus for generating thermal melting curves in a microfluidic device
US20050202470A1 (en) * 2000-11-16 2005-09-15 Caliper Life Sciences, Inc. Binding assays using molecular melt curves
US6942778B1 (en) 2000-11-28 2005-09-13 Nanogen, Inc. Microstructure apparatus and method for separating differently charged molecules using an applied electric field
US6866759B2 (en) * 2000-12-13 2005-03-15 The Regents Of The University Of California Stepped electrophoresis for movement and concentration of DNA
JP4248238B2 (ja) * 2001-01-08 2009-04-02 プレジデント・アンド・フェローズ・オブ・ハーバード・カレッジ マイクロ流体システム用の弁およびポンプならびにマイクロ流体システムを作製するための方法
US20020110926A1 (en) * 2001-01-16 2002-08-15 Caliper Technologies Corp. Emulator device
EP1355823A4 (de) * 2001-01-29 2005-04-20 Caliper Life Sciences Inc Nichtmechanische ventile für strömungssysteme
US6692700B2 (en) 2001-02-14 2004-02-17 Handylab, Inc. Heat-reduction methods and systems related to microfluidic devices
US7670559B2 (en) 2001-02-15 2010-03-02 Caliper Life Sciences, Inc. Microfluidic systems with enhanced detection systems
WO2002103323A2 (en) * 2001-02-15 2002-12-27 Caliper Technologies Corp. Microfluidic systems with enhanced detection systems
US6720148B1 (en) 2001-02-22 2004-04-13 Caliper Life Sciences, Inc. Methods and systems for identifying nucleotides by primer extension
US7867776B2 (en) * 2001-03-02 2011-01-11 Caliper Life Sciences, Inc. Priming module for microfluidic chips
US20050196785A1 (en) * 2001-03-05 2005-09-08 California Institute Of Technology Combinational array for nucleic acid analysis
US7150999B1 (en) 2001-03-09 2006-12-19 Califer Life Sciences, Inc. Process for filling microfluidic channels
US7316769B2 (en) * 2001-03-19 2008-01-08 Cornell Research Foundation, Inc. Length-dependent recoil separation of long molecules
WO2002077259A2 (en) * 2001-03-24 2002-10-03 Aviva Biosciences Corporation Biochips including ion transport detecting structures and methods of use
US7829025B2 (en) 2001-03-28 2010-11-09 Venture Lending & Leasing Iv, Inc. Systems and methods for thermal actuation of microfluidic devices
US7010391B2 (en) 2001-03-28 2006-03-07 Handylab, Inc. Methods and systems for control of microfluidic devices
US7270786B2 (en) 2001-03-28 2007-09-18 Handylab, Inc. Methods and systems for processing microfluidic samples of particle containing fluids
US6852287B2 (en) * 2001-09-12 2005-02-08 Handylab, Inc. Microfluidic devices having a reduced number of input and output connections
US7323140B2 (en) 2001-03-28 2008-01-29 Handylab, Inc. Moving microdroplets in a microfluidic device
US6575188B2 (en) 2001-07-26 2003-06-10 Handylab, Inc. Methods and systems for fluid control in microfluidic devices
US8895311B1 (en) 2001-03-28 2014-11-25 Handylab, Inc. Methods and systems for control of general purpose microfluidic devices
US7192557B2 (en) 2001-03-28 2007-03-20 Handylab, Inc. Methods and systems for releasing intracellular material from cells within microfluidic samples of fluids
EP1384022A4 (de) 2001-04-06 2004-08-04 California Inst Of Techn Nukleinsäure-amplifikation verwendende mikrofluidvorrichtungen
DE60221240T2 (de) * 2001-05-02 2007-10-31 Applera Corp., Foster City Konzentration und reinigung von analyten mit elektrischen feldern
DE60234022D1 (de) * 2001-05-10 2009-11-26 Life Technologies Corp Verfahren und vorrichtungen zur elektrophorese von vorgegossenen, hydratisierbaren trennmedien
US7601251B2 (en) * 2001-05-10 2009-10-13 Life Technologies Corporation Methods and apparatus for low resistance electrophoresis of prior-cast, hydratable separation media
US7473398B2 (en) 2001-05-25 2009-01-06 Roche Diagnostics Operations, Inc. Biosensor
US7214300B2 (en) * 2001-06-04 2007-05-08 Epocal Inc. Integrated electrokinetic devices and methods of manufacture
US7723123B1 (en) 2001-06-05 2010-05-25 Caliper Life Sciences, Inc. Western blot by incorporating an affinity purification zone
US20020187564A1 (en) * 2001-06-08 2002-12-12 Caliper Technologies Corp. Microfluidic library analysis
US6977163B1 (en) 2001-06-13 2005-12-20 Caliper Life Sciences, Inc. Methods and systems for performing multiple reactions by interfacial mixing
US20020195343A1 (en) * 2001-06-20 2002-12-26 Coventor, Inc. Microfabricated separation device employing a virtual wall for interfacing fluids
AU2002326314A1 (en) * 2001-06-20 2003-01-08 Teragenics, Inc. Microfluidic system including a virtual wall fluid interface port for interfacing fluids with the microfluidic system
US7179423B2 (en) 2001-06-20 2007-02-20 Cytonome, Inc. Microfluidic system including a virtual wall fluid interface port for interfacing fluids with the microfluidic system
US20030015425A1 (en) * 2001-06-20 2003-01-23 Coventor Inc. Microfluidic system including a virtual wall fluid interface port for interfacing fluids with the microfluidic system
US7211442B2 (en) * 2001-06-20 2007-05-01 Cytonome, Inc. Microfluidic system including a virtual wall fluid interface port for interfacing fluids with the microfluidic system
EP1270073B1 (de) * 2001-06-28 2005-02-16 Agilent Technologies, Inc. (a Delaware corporation) Mikrofluid-System mit Regler
US7077152B2 (en) * 2001-07-07 2006-07-18 Nanostream, Inc. Microfluidic metering systems and methods
ATE465811T1 (de) * 2001-07-13 2010-05-15 Caliper Life Sciences Inc Methode zur trennung von komponenten eines gemisches
US6825127B2 (en) 2001-07-24 2004-11-30 Zarlink Semiconductor Inc. Micro-fluidic devices
US20060062696A1 (en) * 2001-07-27 2006-03-23 Caliper Life Sciences, Inc. Optimized high throughput analytical systems
US7060171B1 (en) * 2001-07-31 2006-06-13 Caliper Life Sciences, Inc. Methods and systems for reducing background signal in assays
US7014744B2 (en) * 2001-08-24 2006-03-21 Applera Corporation Method of purification and concentration using AC fields with a transfer tip
US6814844B2 (en) * 2001-08-29 2004-11-09 Roche Diagnostics Corporation Biosensor with code pattern
US6796129B2 (en) 2001-08-29 2004-09-28 Catalytica Energy Systems, Inc. Design and control strategy for catalytic combustion system with a wide operating range
US6803568B2 (en) * 2001-09-19 2004-10-12 Predicant Biosciences, Inc. Multi-channel microfluidic chip for electrospray ionization
US6942018B2 (en) * 2001-09-28 2005-09-13 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Electroosmotic microchannel cooling system
US20030062833A1 (en) * 2001-10-03 2003-04-03 Wen-Yen Tai Mini-type decorative bulb capable of emitting light through entire circumferential face
US6607362B2 (en) 2001-10-11 2003-08-19 Agilent Technologies, Inc. Micro paddle wheel pump for precise pumping, mixing, dispensing, and valving of blood and reagents
US7220345B2 (en) * 2001-10-18 2007-05-22 The Board Of Trustees Of The University Of Illinois Hybrid microfluidic and nanofluidic system
US8440093B1 (en) 2001-10-26 2013-05-14 Fuidigm Corporation Methods and devices for electronic and magnetic sensing of the contents of microfluidic flow channels
US20030086333A1 (en) * 2001-11-05 2003-05-08 Constantinos Tsouris Electrohydrodynamic mixing on microfabricated devices
US7247274B1 (en) 2001-11-13 2007-07-24 Caliper Technologies Corp. Prevention of precipitate blockage in microfluidic channels
US6750661B2 (en) * 2001-11-13 2004-06-15 Caliper Life Sciences, Inc. Method and apparatus for controllably effecting samples using two signals
JP2005509883A (ja) * 2001-11-15 2005-04-14 アリックス,インコーポレーテッド 試料チップ
US7691333B2 (en) 2001-11-30 2010-04-06 Fluidigm Corporation Microfluidic device and methods of using same
AU2002351187A1 (en) 2001-11-30 2003-06-17 Fluidigm Corporation Microfluidic device and methods of using same
US7105810B2 (en) * 2001-12-21 2006-09-12 Cornell Research Foundation, Inc. Electrospray emitter for microfluidic channel
US6606251B1 (en) 2002-02-07 2003-08-12 Cooligy Inc. Power conditioning module
US7459127B2 (en) 2002-02-26 2008-12-02 Siemens Healthcare Diagnostics Inc. Method and apparatus for precise transfer and manipulation of fluids by centrifugal and/or capillary forces
EP2581739B1 (de) * 2002-03-05 2015-11-04 Caliper Life Sciences, Inc. Mikrofluidisches Trennverfahren mit kombinierter Druck- und Spannungsregelung
US7195986B1 (en) * 2002-03-08 2007-03-27 Caliper Life Sciences, Inc. Microfluidic device with controlled substrate conductivity
US7252928B1 (en) 2002-03-12 2007-08-07 Caliper Life Sciences, Inc. Methods for prevention of surface adsorption of biological materials to capillary walls in microchannels
US6866758B2 (en) * 2002-03-21 2005-03-15 Roche Diagnostics Corporation Biosensor
WO2003085379A2 (en) 2002-04-01 2003-10-16 Fluidigm Corporation Microfluidic particle-analysis systems
US7312085B2 (en) 2002-04-01 2007-12-25 Fluidigm Corporation Microfluidic particle-analysis systems
AU2003228395B2 (en) * 2002-04-02 2006-12-21 Caliper Life Sciences, Inc. Methods and apparatus for separation and isolation of components from a biological sample
US8241883B2 (en) 2002-04-24 2012-08-14 Caliper Life Sciences, Inc. High throughput mobility shift
KR100523984B1 (ko) * 2002-05-02 2005-10-26 학교법인 포항공과대학교 유체 제어 장치
US6794734B2 (en) * 2002-05-03 2004-09-21 Mia-Com Heterojunction P-I-N diode and method of making the same
US7901939B2 (en) 2002-05-09 2011-03-08 University Of Chicago Method for performing crystallization and reactions in pressure-driven fluid plugs
JP4855680B2 (ja) 2002-05-09 2012-01-18 ザ・ユニバーシティ・オブ・シカゴ 圧力駆動プラグによる輸送と反応のための装置および方法
US7161356B1 (en) 2002-06-05 2007-01-09 Caliper Life Sciences, Inc. Voltage/current testing equipment for microfluidic devices
GB0215779D0 (en) 2002-07-08 2002-08-14 Deltadot Ltd Material separation device
NO20023398D0 (no) * 2002-07-15 2002-07-15 Osmotex As Anordning og fremgangsmåte for transport av v¶ske gjennom materialer
DE10232849A1 (de) * 2002-07-19 2004-02-12 Abb Patent Gmbh Gasanalyseeinrichtung zur Qualitätsüberwachung eines gasförmigen Stoffes oder Stoffgemisches, insbesondere Luft
US11243494B2 (en) 2002-07-31 2022-02-08 Abs Global, Inc. Multiple laminar flow-based particle and cellular separation with laser steering
US7699767B2 (en) 2002-07-31 2010-04-20 Arryx, Inc. Multiple laminar flow-based particle and cellular separation with laser steering
CN1774623B (zh) 2002-07-31 2012-02-01 阿尔利克斯公司 利用全息激光控制分类物质的系统和方法
US7118676B2 (en) * 2003-09-04 2006-10-10 Arryx, Inc. Multiple laminar flow-based particle and cellular separation with laser steering
US7452507B2 (en) * 2002-08-02 2008-11-18 Sandia Corporation Portable apparatus for separating sample and detecting target analytes
EP1535061A2 (de) 2002-08-21 2005-06-01 Shell Internationale Researchmaatschappij B.V. Verfahren zur messung der fluidchemie bei bohr- und produktionsvorgängen
US6881039B2 (en) * 2002-09-23 2005-04-19 Cooligy, Inc. Micro-fabricated electrokinetic pump
WO2004028955A2 (en) 2002-09-25 2004-04-08 California Institute Of Technology Microfluidic large scale integration
US8871446B2 (en) 2002-10-02 2014-10-28 California Institute Of Technology Microfluidic nucleic acid analysis
AU2003278461A1 (en) * 2002-10-16 2004-05-04 Cellectricon Ab Nanoelectrodes and nanotips for recording transmembrane currents in a plurality of cells
US20040076408A1 (en) * 2002-10-22 2004-04-22 Cooligy Inc. Method and apparatus for removeably coupling a heat rejection device with a heat producing device
US6994151B2 (en) * 2002-10-22 2006-02-07 Cooligy, Inc. Vapor escape microchannel heat exchanger
US7932098B2 (en) * 2002-10-31 2011-04-26 Hewlett-Packard Development Company, L.P. Microfluidic system utilizing thin-film layers to route fluid
AU2003286821A1 (en) 2002-11-01 2004-06-07 Cooligy, Inc. Optimal spreader system, device and method for fluid cooled micro-scaled heat exchange
AU2003286855A1 (en) * 2002-11-01 2004-06-07 Cooligy, Inc. Method and apparatus for achieving temperature uniformity and hot spot cooling in a heat producing device
US6986382B2 (en) * 2002-11-01 2006-01-17 Cooligy Inc. Interwoven manifolds for pressure drop reduction in microchannel heat exchangers
WO2004039489A2 (en) * 2002-11-01 2004-05-13 Cellectricon Ab Computer programs,workstations, systems and methods for microfluidic substrates in cell
US7000684B2 (en) 2002-11-01 2006-02-21 Cooligy, Inc. Method and apparatus for efficient vertical fluid delivery for cooling a heat producing device
US7836597B2 (en) 2002-11-01 2010-11-23 Cooligy Inc. Method of fabricating high surface to volume ratio structures and their integration in microheat exchangers for liquid cooling system
US8464781B2 (en) 2002-11-01 2013-06-18 Cooligy Inc. Cooling systems incorporating heat exchangers and thermoelectric layers
US7156159B2 (en) 2003-03-17 2007-01-02 Cooligy, Inc. Multi-level microchannel heat exchangers
US20040255588A1 (en) * 2002-12-11 2004-12-23 Kare Lundberg Catalytic preburner and associated methods of operation
US7125711B2 (en) 2002-12-19 2006-10-24 Bayer Healthcare Llc Method and apparatus for splitting of specimens into multiple channels of a microfluidic device
US7094354B2 (en) 2002-12-19 2006-08-22 Bayer Healthcare Llc Method and apparatus for separation of particles in a microfluidic device
DE10260310B3 (de) * 2002-12-20 2004-05-06 Siemens Ag Mikrostrukturierte Anordnung zur Behandlung eines Fluids
US6725882B1 (en) * 2003-01-03 2004-04-27 Industrial Technology Research Institute Configurable micro flowguide device
JP2006515659A (ja) * 2003-01-17 2006-06-01 カタリティカ エナジー システムズ, インコーポレイテッド 複数燃焼室触媒ガスタービンエンジンのための動的制御システムおよび方法
DE10302720A1 (de) * 2003-01-23 2004-08-05 Steag Microparts Gmbh Mikrofluidischer Schalter zum Anhalten des Flüssigkeitsstroms während eines Zeitintervalls
US7090001B2 (en) * 2003-01-31 2006-08-15 Cooligy, Inc. Optimized multiple heat pipe blocks for electronics cooling
US7044196B2 (en) * 2003-01-31 2006-05-16 Cooligy,Inc Decoupled spring-loaded mounting apparatus and method of manufacturing thereof
SE0300454D0 (sv) * 2003-02-19 2003-02-19 Aamic Ab Nozzles for electrospray ionization and methods of fabricating them
JP4136969B2 (ja) * 2003-03-03 2008-08-20 キヤノン株式会社 流体搬送装置
US20050014134A1 (en) * 2003-03-06 2005-01-20 West Jason Andrew Appleton Viral identification by generation and detection of protein signatures
US7017654B2 (en) 2003-03-17 2006-03-28 Cooligy, Inc. Apparatus and method of forming channels in a heat-exchanging device
US7147764B2 (en) * 2003-03-28 2006-12-12 Applera Corporation Dual electrode injection of analyte into a capillary electrophoretic device
US7604965B2 (en) 2003-04-03 2009-10-20 Fluidigm Corporation Thermal reaction device and method for using the same
US7666361B2 (en) 2003-04-03 2010-02-23 Fluidigm Corporation Microfluidic devices and methods of using same
US7476363B2 (en) 2003-04-03 2009-01-13 Fluidigm Corporation Microfluidic devices and methods of using same
US8828663B2 (en) 2005-03-18 2014-09-09 Fluidigm Corporation Thermal reaction device and method for using the same
US20050145496A1 (en) 2003-04-03 2005-07-07 Federico Goodsaid Thermal reaction device and method for using the same
US7007710B2 (en) * 2003-04-21 2006-03-07 Predicant Biosciences, Inc. Microfluidic devices and methods
US7435381B2 (en) 2003-05-29 2008-10-14 Siemens Healthcare Diagnostics Inc. Packaging of microfluidic devices
US7316543B2 (en) * 2003-05-30 2008-01-08 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Electroosmotic micropump with planar features
US7012342B1 (en) * 2003-06-03 2006-03-14 Sandia National Laboratories Low power, scalable multichannel high voltage controller
CA2529378C (en) 2003-06-20 2014-04-15 F.Hoffmann-La Roche Ag Method and reagent for producing narrow, homogenous reagent strips
US7591302B1 (en) 2003-07-23 2009-09-22 Cooligy Inc. Pump and fan control concepts in a cooling system
US7021369B2 (en) * 2003-07-23 2006-04-04 Cooligy, Inc. Hermetic closed loop fluid system
US7727752B2 (en) 2003-07-29 2010-06-01 Life Technologies Corporation Kinase and phosphatase assays
WO2005011867A2 (en) 2003-07-31 2005-02-10 Handylab, Inc. Processing particle-containing samples
US7231839B2 (en) * 2003-08-11 2007-06-19 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Electroosmotic micropumps with applications to fluid dispensing and field sampling
US7413712B2 (en) 2003-08-11 2008-08-19 California Institute Of Technology Microfluidic rotary flow reactor matrix
US7347617B2 (en) 2003-08-19 2008-03-25 Siemens Healthcare Diagnostics Inc. Mixing in microfluidic devices
US7975489B2 (en) * 2003-09-05 2011-07-12 Kawasaki Jukogyo Kabushiki Kaisha Catalyst module overheating detection and methods of response
AU2004273094B2 (en) * 2003-09-12 2008-07-10 Renewable Lubricants, Inc. Vegetable oil lubricant comprising all-hydroprocessed synthetic oils
US7537807B2 (en) 2003-09-26 2009-05-26 Cornell University Scanned source oriented nanofiber formation
US20050095602A1 (en) * 2003-11-04 2005-05-05 West Jason A. Microfluidic integrated microarrays for biological detection
WO2005075971A1 (en) * 2004-02-02 2005-08-18 Agilent Technologies Inc. Charged particle reduction in analyte processing
US7050146B2 (en) * 2004-02-09 2006-05-23 Asml Netherlands B.V. Lithographic apparatus and device manufacturing method
US7282127B2 (en) * 2004-04-13 2007-10-16 East Carolina Microcapillary devices using high dielectric constant materials and related methods
ES2553097T3 (es) 2004-05-03 2015-12-04 Handylab, Inc. Procesamiento de muestras que contienen polinucleótidos
US8852862B2 (en) 2004-05-03 2014-10-07 Handylab, Inc. Method for processing polynucleotide-containing samples
US7188662B2 (en) 2004-06-04 2007-03-13 Cooligy, Inc. Apparatus and method of efficient fluid delivery for cooling a heat producing device
US9477233B2 (en) 2004-07-02 2016-10-25 The University Of Chicago Microfluidic system with a plurality of sequential T-junctions for performing reactions in microdroplets
ATE446386T1 (de) 2004-07-28 2009-11-15 Canon Us Life Sciences Inc Verfahren zur überwachung genomischer dna von organismen
US20060022130A1 (en) * 2004-07-29 2006-02-02 Predicant Biosciences, Inc., A Delaware Corporation Microfluidic devices and methods with integrated electrical contact
US7211184B2 (en) * 2004-08-04 2007-05-01 Ast Management Inc. Capillary electrophoresis devices
US20060060769A1 (en) 2004-09-21 2006-03-23 Predicant Biosciences, Inc. Electrospray apparatus with an integrated electrode
US7524672B2 (en) * 2004-09-22 2009-04-28 Sandia Corporation Microfluidic microarray systems and methods thereof
US7592139B2 (en) 2004-09-24 2009-09-22 Sandia National Laboratories High temperature flow-through device for rapid solubilization and analysis
US7591883B2 (en) * 2004-09-27 2009-09-22 Cornell Research Foundation, Inc. Microfiber supported nanofiber membrane
US7727477B2 (en) * 2004-12-10 2010-06-01 Bio-Rad Laboratories, Inc. Apparatus for priming microfluidics devices with feedback control
GB0428548D0 (en) * 2004-12-31 2005-02-09 Sideris Dimitrios Electrophoresis method and device for separating objects
CN101163800B (zh) * 2005-02-18 2013-04-17 佳能美国生命科学公司 鉴定生物的基因组dna的装置和方法
US20060246493A1 (en) 2005-04-04 2006-11-02 Caliper Life Sciences, Inc. Method and apparatus for use in temperature controlled processing of microfluidic samples
US7417418B1 (en) * 2005-06-14 2008-08-26 Ayliffe Harold E Thin film sensor
CN100437106C (zh) * 2005-08-12 2008-11-26 浙江大学 一种可应用于毛细管电泳的电化学电流测量装置
EP1754536B1 (de) 2005-08-16 2008-12-24 Agilent Technologies, Inc. Flüssigkeitseinspritzsystem
EP2549269A1 (de) * 2005-10-04 2013-01-23 Headway Technologies, Inc. Mikrofluidischer Nachweis von Analyten
WO2007047606A2 (en) * 2005-10-17 2007-04-26 Board Of Supervisors Of Louisiana State University And Agricultural And Mechanical College Electrokinetic thermal cycler and reactor
JP4749867B2 (ja) 2006-01-13 2011-08-17 パナソニック株式会社 電気泳動装置
US7913719B2 (en) 2006-01-30 2011-03-29 Cooligy Inc. Tape-wrapped multilayer tubing and methods for making the same
US9995668B2 (en) * 2006-02-01 2018-06-12 Ecole polytechnique fédérale de Lausanne (EPFL) Apparatus for manipulating, modifying and characterizing particles in a micro channel
US20110189714A1 (en) * 2010-02-03 2011-08-04 Ayliffe Harold E Microfluidic cell sorter and method
US9293311B1 (en) 2006-02-02 2016-03-22 E. I. Spectra, Llc Microfluidic interrogation device
US8616048B2 (en) * 2006-02-02 2013-12-31 E I Spectra, LLC Reusable thin film particle sensor
US8171778B2 (en) * 2006-05-05 2012-05-08 E I Spectra, LLC Thin film particle sensor
US9452429B2 (en) 2006-02-02 2016-09-27 E. I. Spectra, Llc Method for mutiplexed microfluidic bead-based immunoassay
CA2571904A1 (en) * 2006-02-15 2007-08-15 Fio Corporation System and method of detecting pathogens
US8088616B2 (en) 2006-03-24 2012-01-03 Handylab, Inc. Heater unit for microfluidic diagnostic system
WO2007112114A2 (en) 2006-03-24 2007-10-04 Handylab, Inc. Integrated system for processing microfluidic samples, and method of using same
US10900066B2 (en) 2006-03-24 2021-01-26 Handylab, Inc. Microfluidic system for amplifying and detecting polynucleotides in parallel
US8883490B2 (en) 2006-03-24 2014-11-11 Handylab, Inc. Fluorescence detector for microfluidic diagnostic system
US7998708B2 (en) 2006-03-24 2011-08-16 Handylab, Inc. Microfluidic system for amplifying and detecting polynucleotides in parallel
US11806718B2 (en) 2006-03-24 2023-11-07 Handylab, Inc. Fluorescence detector for microfluidic diagnostic system
JP2009532868A (ja) 2006-03-30 2009-09-10 クーリギー インコーポレイテッド 冷却装置及び冷却装置製造方法
US7715194B2 (en) 2006-04-11 2010-05-11 Cooligy Inc. Methodology of cooling multiple heat sources in a personal computer through the use of multiple fluid-based heat exchanging loops coupled via modular bus-type heat exchangers
US7846314B2 (en) * 2006-05-11 2010-12-07 Agilent Technologies , Inc Handling a plurality of samples
US8169600B2 (en) * 2006-09-15 2012-05-01 Arryx, Inc. Surface mapping by optical manipulation of particles in relation to a functionalized surface
EP2091647A2 (de) 2006-11-14 2009-08-26 Handylab, Inc. Mikrofluidisches system für parallele amplifikation und erkennung von polynukleotiden
CA2580589C (en) * 2006-12-19 2016-08-09 Fio Corporation Microfluidic detection system
WO2008085991A2 (en) 2007-01-08 2008-07-17 U.S. Genomics, Inc. Reaction chamber
US7799656B2 (en) 2007-03-15 2010-09-21 Dalsa Semiconductor Inc. Microchannels for BioMEMS devices
CA2682826C (en) 2007-04-02 2013-08-13 Fio Corporation System and method of deconvolving multiplexed fluorescence spectral signals generated by quantum dot optical coding technology
AU2008237428A1 (en) * 2007-04-05 2008-10-16 Massachusetts Institute Of Technology System for electrophoretic stretching of biomolecules using micro scale T-junctions
TWI322032B (en) * 2007-06-20 2010-03-21 Nat Univ Chung Cheng Microfluid mixer
CN101821322B (zh) 2007-06-22 2012-12-05 Fio公司 制备量子点掺杂的聚合物微珠的系统和方法
US8551786B2 (en) * 2007-07-09 2013-10-08 Fio Corporation Systems and methods for enhancing fluorescent detection of target molecules in a test sample
US20100294665A1 (en) * 2007-07-12 2010-11-25 Richard Allen Method and system for transferring and/or concentrating a sample
US8105783B2 (en) 2007-07-13 2012-01-31 Handylab, Inc. Microfluidic cartridge
US8324372B2 (en) 2007-07-13 2012-12-04 Handylab, Inc. Polynucleotide capture materials, and methods of using same
US8133671B2 (en) 2007-07-13 2012-03-13 Handylab, Inc. Integrated apparatus for performing nucleic acid extraction and diagnostic testing on multiple biological samples
US20090136385A1 (en) 2007-07-13 2009-05-28 Handylab, Inc. Reagent Tube
US9186677B2 (en) 2007-07-13 2015-11-17 Handylab, Inc. Integrated apparatus for performing nucleic acid extraction and diagnostic testing on multiple biological samples
USD621060S1 (en) 2008-07-14 2010-08-03 Handylab, Inc. Microfluidic cartridge
US8287820B2 (en) 2007-07-13 2012-10-16 Handylab, Inc. Automated pipetting apparatus having a combined liquid pump and pipette head system
US9618139B2 (en) 2007-07-13 2017-04-11 Handylab, Inc. Integrated heater and magnetic separator
US8182763B2 (en) 2007-07-13 2012-05-22 Handylab, Inc. Rack for sample tubes and reagent holders
US8016260B2 (en) 2007-07-19 2011-09-13 Formulatrix, Inc. Metering assembly and method of dispensing fluid
US20100257027A1 (en) * 2007-07-23 2010-10-07 Fio Corporation Method and system for collating, storing, analyzing and enabling access to collected and analyzed data associated with biological and environmental test subjects
WO2009048673A2 (en) 2007-07-26 2009-04-16 University Of Chicago Stochastic confinement to detect, manipulate, and utilize molecules and organisms
TW200912621A (en) 2007-08-07 2009-03-16 Cooligy Inc Method and apparatus for providing a supplemental cooling to server racks
US7531997B2 (en) * 2007-08-08 2009-05-12 Stmicroelectronics S.R.L. Control device of a switching converter and relative switching converter
WO2009046540A1 (en) * 2007-10-12 2009-04-16 Fio Corporation Flow focusing method and system for forming concentrated volumes of microbeads, and microbeads formed further thereto
US8250877B2 (en) 2008-03-10 2012-08-28 Cooligy Inc. Device and methodology for the removal of heat from an equipment rack by means of heat exchangers mounted to a door
US9297571B1 (en) 2008-03-10 2016-03-29 Liebert Corporation Device and methodology for the removal of heat from an equipment rack by means of heat exchangers mounted to a door
US20090250345A1 (en) * 2008-04-03 2009-10-08 Protea Biosciences, Inc. Microfluidic electroelution devices & processes
US20090250347A1 (en) * 2008-04-03 2009-10-08 Protea Biosciences, Inc. Microfluidic devices & processes for electrokinetic transport
EP3002489B1 (de) 2008-05-16 2017-09-20 President and Fellows of Harvard College Ventile und andere flusssteuerungen für fluidische systeme einschliesslich mikrofluidischer systeme
WO2009149257A1 (en) 2008-06-04 2009-12-10 The University Of Chicago The chemistrode: a plug-based microfluidic device and method for stimulation and sampling with high temporal, spatial, and chemical resolution
US20090309521A1 (en) * 2008-06-17 2009-12-17 World Properties, Inc. Driver for MEMS device
BRPI0915514A2 (pt) 2008-06-25 2016-01-26 Fio Corp sistema e método de infra-estrutura de alerta de ameaça biológica, dispositivo de alerta de ameaça biológica e um método para alertar um usuário do mesmo
USD618820S1 (en) 2008-07-11 2010-06-29 Handylab, Inc. Reagent holder
USD787087S1 (en) 2008-07-14 2017-05-16 Handylab, Inc. Housing
WO2010017321A1 (en) 2008-08-05 2010-02-11 Cooligy Inc. Bonded metal and ceramic plates for thermal management of optical and electronic devices
CA2735273A1 (en) 2008-08-29 2010-03-04 Fio Corporation A single-use handheld diagnostic test device, and an associated system and method for testing biological and environmental test samples
US8361716B2 (en) 2008-10-03 2013-01-29 Pathogenetix, Inc. Focusing chamber
US8361299B2 (en) * 2008-10-08 2013-01-29 Sage Science, Inc. Multichannel preparative electrophoresis system
EP2347252B1 (de) * 2008-10-08 2014-07-16 Sage Science, Inc. Mehrkanalsystem für die präparative elektrophorese
US7927904B2 (en) 2009-01-05 2011-04-19 Dalsa Semiconductor Inc. Method of making BIOMEMS devices
RU2578023C2 (ru) 2009-01-13 2016-03-20 Эф-Ай-Оу Корпорейшн Портативный диагностический прибор и способ его применения с электронным устройством и диагностическим картриджем при диагностическом экспресс-исследовании
US8100293B2 (en) 2009-01-23 2012-01-24 Formulatrix, Inc. Microfluidic dispensing assembly
JP5766178B2 (ja) 2009-03-24 2015-08-19 ザ・ユニバーシティ・オブ・シカゴThe University Of Chicago SlipChip装置および方法
US9447461B2 (en) 2009-03-24 2016-09-20 California Institute Of Technology Analysis devices, kits, and related methods for digital quantification of nucleic acids and other analytes
US9464319B2 (en) 2009-03-24 2016-10-11 California Institute Of Technology Multivolume devices, kits and related methods for quantification of nucleic acids and other analytes
US10196700B2 (en) 2009-03-24 2019-02-05 University Of Chicago Multivolume devices, kits and related methods for quantification and detection of nucleic acids and other analytes
WO2010138456A2 (en) 2009-05-29 2010-12-02 The Regents Of The University Of California B cell signature associated with tolerance in transplant recipients
AU2010257118B2 (en) 2009-06-04 2014-08-28 Lockheed Martin Corporation Multiple-sample microfluidic chip for DNA analysis
US8083116B2 (en) 2009-10-14 2011-12-27 De Poan Pneumatic Corp. Braking and driving mechanism for nail gun
US20120322677A1 (en) 2009-10-19 2012-12-20 Stichting Het Nederlands Kanker Instituut Predicting benefit of anti-cancer therapy via array comparative genomic hybridization
US20120316080A1 (en) 2009-10-19 2012-12-13 Stichting Het Nederlands Kanker Instiuut Differentiation between brca2-associated tumours and sporadic tumours via array comparative genomic hybridization
EP2491140A1 (de) 2009-10-19 2012-08-29 Stichting Het Nederlands Kanker Instituut Vorhersage des nutzens einer krebstherapie mit array-basierter vergleichender genomhybridisierung
US8262880B2 (en) * 2010-03-09 2012-09-11 Empire Technology Development Llc Electrokinetic pumping of nonpolar solvents using ionic fluid
US8974651B2 (en) 2010-04-17 2015-03-10 C.C. Imex Illuminator for visualization of fluorophores
WO2012038837A2 (en) 2010-09-20 2012-03-29 Stichting Het Nederlands Kanker Instituut Methods for predicting response to anti-cancer therapy in cancer patients
CA2814720C (en) 2010-10-15 2016-12-13 Lockheed Martin Corporation Micro fluidic optic design
US10908066B2 (en) 2010-11-16 2021-02-02 1087 Systems, Inc. Use of vibrational spectroscopy for microfluidic liquid measurement
AR080285A1 (es) * 2010-12-14 2012-03-28 Comision Nac De En Atomica Dispositivo de fluidica para electroforesis de moleculas.
WO2012142516A1 (en) 2011-04-15 2012-10-18 Becton, Dickinson And Company Scanning real-time microfluidic thermo-cycler and methods for synchronized thermocycling and scanning optical detection
USD692162S1 (en) 2011-09-30 2013-10-22 Becton, Dickinson And Company Single piece reagent holder
ES2825905T3 (es) 2011-09-30 2021-05-17 Becton Dickinson Co Tira reactiva unificada
WO2013067202A1 (en) 2011-11-04 2013-05-10 Handylab, Inc. Polynucleotide sample preparation device
CN107881219B (zh) 2012-02-03 2021-09-10 贝克顿·迪金森公司 用于分子诊断测试分配和测试之间兼容性确定的外部文件
US9322054B2 (en) 2012-02-22 2016-04-26 Lockheed Martin Corporation Microfluidic cartridge
US8804105B2 (en) 2012-03-27 2014-08-12 E. I. Spectra, Llc Combined optical imaging and electrical detection to characterize particles carried in a fluid
US8685708B2 (en) 2012-04-18 2014-04-01 Pathogenetix, Inc. Device for preparing a sample
EP2906935B1 (de) 2012-10-12 2018-04-04 Sage Science, Inc. Molekülfraktionierungsvorrichtung mit seitlicher elution
CA2903382A1 (en) * 2013-03-01 2014-09-12 Wave 80 Biosciences, Inc. Methods and systems for enhanced microfluidic processing
WO2014134533A1 (en) * 2013-03-01 2014-09-04 Wave 80 Biosciences, Inc. Long-throw microfluidic actuator
US9995412B2 (en) 2013-03-01 2018-06-12 Wave 80 Biosciences, Inc. Long-throw microfluidic actuator
EP2803410A1 (de) * 2013-05-17 2014-11-19 Imec Elektrisch gesteuerte mikrofluidische Vorrichtung
US8961904B2 (en) 2013-07-16 2015-02-24 Premium Genetics (Uk) Ltd. Microfluidic chip
US11796449B2 (en) 2013-10-30 2023-10-24 Abs Global, Inc. Microfluidic system and method with focused energy apparatus
US9835587B2 (en) 2014-04-01 2017-12-05 C.C. Imex Electrophoresis running tank assembly
CA2964487C (en) 2014-10-15 2024-03-19 Sage Science, Inc. Apparatuses, methods and systems for automated processing of nucleic acids and electrophoretic sample preparation
WO2016132222A2 (en) 2015-02-19 2016-08-25 Premium Genetics (Uk) Ltd. Scanning infrared measurement system
US11542495B2 (en) 2015-11-20 2023-01-03 Sage Science, Inc. Preparative electrophoretic method for targeted purification of genomic DNA fragments
WO2017095813A1 (en) 2015-11-30 2017-06-08 Intabio, Inc. Devices and methods for sample characterization
RU2643179C1 (ru) * 2016-09-19 2018-01-31 Федеральное государственное унитарное предприятие "Научно-производственный центр автоматики и приборостроения имени академика Н.А. Пилюгина" (ФГУП "НПЦАП") Цифровой сервопривод
CA3055306A1 (en) 2017-04-07 2018-10-11 Sage Science, Inc. Systems and methods for detection of genetic structural variation using integrated electrophoretic dna purification
SG11202007188RA (en) 2018-01-29 2020-08-28 Intabio Inc Devices, methods and kits for sample characterization
EP3796998A1 (de) 2018-05-23 2021-03-31 ABS Global, Inc. Systeme und verfahren zur teilchenfokussierung in mikrokanälen
CN112534549A (zh) 2018-05-31 2021-03-19 因塔生物公司 用于微流体系统与质谱联用的软件
EP4245140A3 (de) 2019-04-18 2024-01-17 ABS Global, Inc. System und verfahren zur kontinuierlichen zugabe eines kryoprotektivums
US11285484B2 (en) 2019-08-12 2022-03-29 Intabio, Llc Multichannel isoelectric focusing devices and high voltage power supplies
US11628439B2 (en) 2020-01-13 2023-04-18 Abs Global, Inc. Single-sheath microfluidic chip
WO2024070313A1 (ja) * 2022-09-30 2024-04-04 富士フイルム株式会社 電気泳動装置、電気泳動装置の制御方法、及び電気泳動装置の制御プログラム

Family Cites Families (34)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3630882A (en) * 1968-06-13 1971-12-28 Ortec Inc Apparatus for particle separation
DE2412956A1 (de) * 1974-03-18 1975-10-02 Pharmacia Fine Chemicals Ab Verfahren und vorrichtung zur regelung der leistungszufuhr zu einer elektrophoresenzelle
US3906333A (en) * 1974-09-30 1975-09-16 United Aircraft Corp Low cost switching high voltage supply
DE2708255A1 (de) * 1977-02-25 1978-08-31 Bischl Johann Betriebsgeraet fuer eine elektrophoresevorrichtung
US4155112A (en) * 1977-06-06 1979-05-15 Motorola, Inc. Power supply circuitry
IL57186A (en) * 1979-04-30 1982-03-31 Mg Electronics Ltd Dc/dc converter power supply
US4433299A (en) * 1980-03-07 1984-02-21 Kureha Kagaku Kogyo Kabushiki Kaisha Method and apparatus for measuring interfacial electrokinetic phenomena
US4459198A (en) * 1981-07-27 1984-07-10 Shimadzu Corporation Electrophoretic apparatus
US4816123A (en) * 1986-04-16 1989-03-28 The Perkin-Elmer Corporation Method of fabricating capillary electrophoresis separation channels
US4908112A (en) * 1988-06-16 1990-03-13 E. I. Du Pont De Nemours & Co. Silicon semiconductor wafer for analyzing micronic biological samples
US4911817A (en) * 1988-10-20 1990-03-27 Eastman Kodak Company Electrophoresis apparatus
US5126022A (en) * 1990-02-28 1992-06-30 Soane Tecnologies, Inc. Method and device for moving molecules by the application of a plurality of electrical fields
GB2244135B (en) * 1990-05-04 1994-07-13 Gen Electric Co Plc Sensor devices
US5605662A (en) * 1993-11-01 1997-02-25 Nanogen, Inc. Active programmable electronic devices for molecular biological analysis and diagnostics
EP0544969B1 (de) * 1991-12-06 1997-03-05 Ciba-Geigy Ag Elektrophoretische Trennvorrichtung und elektrophoretisches Trennverfahren
US5498392A (en) 1992-05-01 1996-03-12 Trustees Of The University Of Pennsylvania Mesoscale polynucleotide amplification device and method
US5304487A (en) 1992-05-01 1994-04-19 Trustees Of The University Of Pennsylvania Fluid handling in mesoscale analytical devices
US5486335A (en) * 1992-05-01 1996-01-23 Trustees Of The University Of Pennsylvania Analysis based on flow restriction
US5309082A (en) * 1992-07-10 1994-05-03 Hewlett-Packard Company Hybrid linear-switching power supply
US5639423A (en) * 1992-08-31 1997-06-17 The Regents Of The University Of Calfornia Microfabricated reactor
US5286356A (en) * 1993-01-21 1994-02-15 Millipore Corporation Method for sample analysis using capillary electrophoresis
JPH06265447A (ja) * 1993-03-16 1994-09-22 Hitachi Ltd 微量反応装置およびこれを使用する微量成分測定装置
JP2596314B2 (ja) * 1993-05-31 1997-04-02 日本電気株式会社 スイッチング電源回路
US5328578A (en) * 1993-06-15 1994-07-12 Hewlett-Packard Company Capillary electrophoresis with tracking separation field
GB9320286D0 (en) 1993-10-01 1993-11-17 Drew Scient Ltd Electro-chemical detector
EP0653631B1 (de) * 1993-11-11 2003-05-14 Aclara BioSciences, Inc. Vorrichtung und Verfahren zur elektrophoretischen Trennung von fluiden Substanzgemischen
US5580435A (en) * 1994-06-10 1996-12-03 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University System for detecting components of a sample in electrophoretic separation
US6001229A (en) * 1994-08-01 1999-12-14 Lockheed Martin Energy Systems, Inc. Apparatus and method for performing microfluidic manipulations for chemical analysis
US5585069A (en) * 1994-11-10 1996-12-17 David Sarnoff Research Center, Inc. Partitioned microelectronic and fluidic device array for clinical diagnostics and chemical synthesis
AU705351B2 (en) * 1994-11-10 1999-05-20 Orchid Biosciences, Inc. Liquid distribution system
US5573651A (en) * 1995-04-17 1996-11-12 The Dow Chemical Company Apparatus and method for flow injection analysis
US5856174A (en) * 1995-06-29 1999-01-05 Affymetrix, Inc. Integrated nucleic acid diagnostic device
US5800690A (en) 1996-07-03 1998-09-01 Caliper Technologies Corporation Variable control of electroosmotic and/or electrophoretic forces within a fluid-containing structure via electrical forces
US5906723A (en) * 1996-08-26 1999-05-25 The Regents Of The University Of California Electrochemical detector integrated on microfabricated capillary electrophoresis chips

Also Published As

Publication number Publication date
ZA975948B (en) 1998-03-19
EP0816837A1 (de) 1998-01-07
EP0816837B1 (de) 2006-04-26
US6413401B1 (en) 2002-07-02
AU3672497A (en) 1998-01-21
CA2258699C (en) 2003-04-01
EP0909386A1 (de) 1999-04-21
CA2258699A1 (en) 1998-01-08
CN1143129C (zh) 2004-03-24
CN1224498A (zh) 1999-07-28
BR9710193A (pt) 2000-01-11
TW345683B (en) 1998-11-21
US5800690A (en) 1998-09-01
EP0909386A4 (de) 2005-01-19
NZ333438A (en) 2000-08-25
JP2000513813A (ja) 2000-10-17
JP3496156B2 (ja) 2004-02-09
ATE324584T1 (de) 2006-05-15
US5965001A (en) 1999-10-12
EP1241472A3 (de) 2003-12-17
DE69735739D1 (de) 2006-06-01
EP1241472A2 (de) 2002-09-18
AU718697C (en) 2001-07-26
AU718697B2 (en) 2000-04-20
WO1998000707A1 (en) 1998-01-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE69735739T2 (de) Variable Überwachung von elektroosmotischen und/oder elektroforetischen Kräften in einer in einem Fluidum enthaltenen Anordnung durch elektrische Kräfte
DE60132185T2 (de) Mehrfach-reservoir-drucksteuersystem
DE69732935T2 (de) Elektrokinetische Pipette, sowie Mittel zum Kompensieren von elektrophoretischen Scheidungseffekten
DE112014000923B4 (de) Mikrofluidchip mit dielektrophoretischen Elektroden, die sich in einem hydrophilen Fließweg erstrecken
DE19928410C2 (de) Gerätegehäuse mit einer Einrichtung zum Betrieb eines Labor-Mikrochips
EP1270073B1 (de) Mikrofluid-System mit Regler
EP1108149B1 (de) Miniaturisierter fluidstromschalter
DE112018005405B4 (de) REGELUNG DES pH-WERTES ZUM DETEKTIEREN VON ANALYTEN
DE19928412C2 (de) Versorgungselement für einen Labor-Mikrochip
DE69912284T2 (de) Zelle für elektrochemilumineszenz mit potentialfreien reaktionselektroden
DE102004014537A1 (de) Chipintegrierter Detektor zum Analysieren von Flüssigkeiten
EP1979738B1 (de) Anordnung zur erzeugung von flüssigkeitsströmungen und/oder teilchenströmen, verfahren zu ihrer herstellung und zu ihrem betrieb sowie ihre verwendung
DE60302544T2 (de) Mikrofluidische bewegung
DE102007043132A1 (de) Biosensor und ein Verfahren zum Messen einer Konzentration eines Analyten in einem Medium
DE102004062874A1 (de) Elektrokinetische Mikroleistungszelle, die einen Mikrofluidchip des Mehrfachkanaltyps verwendet
DE4105107A1 (de) Kontinuierliches durchfluss-analysesystem, insbesondere fliess-injektions-analysesystem und verfahren zum betrieb eines derartigen analysesystems
DE112005002204T5 (de) Integriertes Sensorenfeld zum Erzeugen eines Bio-Fingerprints eines Analyts
DE60026363T2 (de) Elektroforetische trennungsvorrichtung und zugehöriges verwendungsverfahren
KR100596953B1 (ko) 전기적변수에의한유체-함유구조물내의전기삼투압또는전기영동력의가변제어를위한장치및방법
EP1128075A2 (de) Mikropumpe und/oder Mikromischer mit integriertem Sensor und Verfahren zu dessen Herstellung
MXPA99000036A (en) Variable control of the electroosmotic and / or electroforetic forces inside a quecony structure flush via electricity forces
DE602004013045T2 (de) Mischen von flüssigkeiten
DE10315080A1 (de) Sensor-Anordnung und Sensor-Array
WO2005050185A2 (de) Verfahren zur trennung von chemischen substanzen und/oder partikeln, vorrichtung und ihre verwendung

Legal Events

Date Code Title Description
8364 No opposition during term of opposition